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Dumeril's Clam Worm

Platynereis dumerilii (Audouin & Milne Edwards 1833)

Breeding Season

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Costello, D.P. and C. Henley (1971). Methods for obtaining and handling marine eggs and embryos. Marine Biological Laboratory, Woods Hole, MA (Second Edition)
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C. Henley

Care of Adults

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Fertilization and Cleavage

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Later Stages of Development

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Costello, D.P. and C. Henley (1971). Methods for obtaining and handling marine eggs and embryos. Marine Biological Laboratory, Woods Hole, MA (Second Edition)
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Living Material

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References

  • Just, E. E., 1915a. An experimental analysis of fertilization in Platynereis megalops. Biol. Bull., 28: 93-114.
  • Just, E. E., 1915b. The morphology of normal fertilization in Platynereis megalops. J. Morph. 26: 217-233.
  • Just, E. E., 1929. Effects of low temperature on fertilization and development in the egg of Platynereis megalops. Biol. Bull., 57: 439-442.
  • Just, E. E., 1939. The Biology of the Cell Surface. P. Blakiston's Son & Co., Inc., Philadelphia.

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Costello, D.P. and C. Henley (1971). Methods for obtaining and handling marine eggs and embryos. Marine Biological Laboratory, Woods Hole, MA (Second Edition)
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Preparation of Cultures

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Procuring Gametes

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Rate of Development

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The Unfertilized Ovum

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Platynereis dumerilii ( German )

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Weibliche Epitoke von Platynereis dumerilii, durch die enthaltenen Eier gelb gefärbt[1]
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Männliche Epitoke von Platynereis dumerilii, vorn durch Sperma weiß gefärbt, hinten durch hämoglobinhaltiges Blut rot gefärbt[1]

Platynereis dumerilii gehört zur Gruppe der Borstenwürmer.[2] Die Art wurde zuerst in die Gattung Nereis eingeordnet[3] und später Platynereis zugeordnet.[4] Platynereis dumerilii lebt in gemäßigten bis tropischen Zonen in küstennahen marinen Gewässern, und kann an vielen Orten gefunden werden: Bei den Azoren, im Mittelmeer, in der Nordsee, im Ärmelkanal und im Atlantik bis runter zum Kap der Guten Hoffnung, im Schwarzen Meer, im Roten Meer, im Persischen Golf, im Japanischen Meer, im Pazifik und bei den Kerguelen.[4] Platynereis dumerilii ist heute ein wichtiges Labortier,[5] gilt als lebendes Fossil[6] und wird für viele phylogenetische Untersuchungen als Modellorganismus angesehen. Platynereis dumerilii wird 3 bis 18 Monate alt,[5] die Männchen werden 2 bis 3 cm lang, die Weibchen 3 bis 4 cm.[7]

Habitat

Platynereis-dumerilii-Würmer bauen Wohnröhren auf ihrem Substrat. Das Substrat können mit Algen bedeckte Hartböden,[8] Seegras,[9][10] Flöße aus pelagischen Sargassum in der Sargassosee[11][12] oder sogar verrottende Pflanzenreste sein.[13] Platynereis dumerilii lebt gewöhnlich in einer Tiefe von 0 bis 5 m[14][15][9][8] und ist daher typisch für flache helle infra-litorale Umgebungen.[14] Aber Platynereis dumerilii wurde auch auf einer Boje in 50 m[16] und auf verrottenden Seetang in 100 m gefunden[17] und kann auch in weniger günstigen Umgebungen leben, wie z. B. in verschmutzten Gebieten in der Nähe von Abwassereinleitungen.[18] Platynereis dumerilii dominiert verschmutzte Gewässer.[19][20] Auch in Bezug auf den pH-Wert zeigt die Art, ungewöhnlich für Meeresorganismen, eine große ökologische Plastizität.[21]

Fortpflanzung und Entwicklung

Platynereis dumerilii ist getrenntgeschlechtlich:[22] Bei der Paarung umkreist das Männchen das Weibchen, dabei schwimmt das Weibchen selbst in kleinen Kreisen. Beide geben Eier und Spermien ins Wasser, was durch Sexualpheromone ausgelöst wird. Die Eier werden im Wasser außerhalb des Körpers befruchtet.[23] Platynereis dumerilii hat, wie andere Nereididen, keine segmentalen Gonaden: Die Eizellen reifen frei schwimmend in der Leibeshöhle (Coelom)[22] und färben den Körper des reifen Weibchens gelb.[1]

Platynereis dumerilii entwickelt sich sehr stereotypisch zwischen Gelegen und daher kann die Zeit benutzt werden um das Stadium der Larven von Platynereis dumerilii zu bestimmen. Jedoch beeinflusst die Temperatur die Entwicklungsgeschwindigkeit sehr.[1] Daher gelten die die folgenden Entwicklungszeiten für 18 °C:

Nach 24 Stunden schlüpft aus einem befruchteten Ei eine Trochophora-Larve, die mit 48 Stunden zur Metatrochophora wird.[1] Sowohl Trochophora als auch Metatrochophora schwimmen mit einem Wimpernkranz im Wasser und sind positiv phototaktisch.[24] Die Metatrochophora besitzt neben den Larvalaugen bereits die Anlagen für die komplizierter gebauten definiten Augen des erwachsenen Wurmes.[25][26] Einen Tag später, mit 72 Stunden wird aus der Metatrochophora eine Nektochaeten-Larve. Die Nektochaeten-Larve hat bereits drei Segmente, jedes mit einem Paar Parapodien, die Borsten tragen, welche der Fortbewegung dienen.[1] Die Nektochaeten-Larve kann zwischen positiver und negativer Phototaxis wechseln.[27] Fünf bis sieben Tage nach Befruchtung fangen die Larven an zu fressen und entwickeln sich mit individueller Geschwindigkeit abhängig vom Nahrungsangebot. Nach drei bis vier Wochen, wenn sechs Segmente gebildet worden sind, bildet sich der Kopf mit den Antennen und Mundwerkzeugen.[1]

Photorezeptorzellen

Platynereis-dumerilii-Larven besitzen zwei Arten von Photorezeptorzellen: Rhabdomerische und ziliäre Photorezeptorzellen.

Die ziliären Photorezeptorzellen befinden sich tief im Larvengehirn. Sie werden nicht durch Pigment beschattet, daher nehmen sie Licht von allen Seiten wahr. Sie gleichen molekular und morphologisch den Zapfen und Stäbchen des menschlichen Auges und exprimieren außerdem ein ziliäres Opsin, das den visuellen ziliären Opsinen der Stäbchen und Zapfen der Wirbeltiere mehr ähnelt als den visuellen rhabdomerischen Opsinen der Wirbellosen. Daraus wird geschlossen, dass das Urbilaterium, der letzte gemeinsame Vorfahre von Weichtieren, Arthropoden und Wirbeltieren, bereits ziliäre Photorezeptorzellen besaß.[28][29][30] Das ziliäre Opsin ist UV-empfindlich (λmax = 383 nm),[31] daher reagieren die ziliären Photorezeptorzellen auf ungerichtetes UV-Licht und lassen die Larven nach unten schwimmen. Dies bildet mit Phototaxis von den rhabdomerischen Photorezeptorzellen der Augen einen farbbasierten Tiefenmesser.[32]

Eine rhabdomerische Photorezeptorzelle bildet mit einer Pigmentzelle ein einfaches Auge.[25] Ein Paar dieser Augen vermittelt Phototaxis in der frühen Trochophora-Larve von Platynereis dumerilii.[24] In der späteren Nektochaeten-Larve wird Phototaxis durch die komplexeren definiten Augen vermittelt.[27] Die definiten Augen exprimieren wenigstens drei Opsine: Zwei rhabdomerische Opsine und ein Go-Opsin.[26][33] Die drei Opsine dort vermitteln Phototaxis alle auf die gleiche Weise durch Depolarisation,[33] obwohl ein Muschel-Go-opsin bekannt ist, das hyperpolarisiert.[34][35]

Genom

Das Genom von Platynereis dumerilii ist diploid (2n Chromosomen) und hat einen haploiden Satz von n = 14 Chromosomen.[7][36] Es enthält ungefähr 1 Gbp (Gigabasenpaare) oder 10 9 Basenpaare.[37] Diese Genomgröße liegt nahe dem für andere Tiere beobachteten Durchschnitt. Verglichen mit vielen klassischen wirbellosen molekularen Modellorganismen ist dieses Genom eher groß und daher eine Herausforderung, um genregulatorische Elemente zu identifizieren, die weit von dem entsprechenden Promotor entfernt sein können. Aber es ist intronreich, anders als die Genome von Drosophila melanogaster und Caenorhabditis elegans und ähnelt folglich stärker den Wirbeltier-Genomen einschließlich des menschlichen Genoms.[38]

Literatur

  • Carl Hauenschild, Albrecht Fischer: Platynereis dumerilii. Gustav Fischer Verlag, 1969 ISBN 3-437-30097-0
  • Tilman Harder: Isolierung und Strukturaufklärung eines Sexualpheromons des marinen Polychaeten Platynereis dumerilii (Annelida, Polychaeta). Tectum Verlag, 1997 ISBN 3-89608-099-7

Bildmedien

  • Fischer, Albrecht (Mainz): Der Meeresringelwurm Platynereis dumerilii: Ein Labortier stellt sich vor. Jürgen Kaeding (Kamera, Schnitt); Thomas Spielböck (DVD-Authoring); Verena Dietrich (Redaktion); Walter Stickan (Projektleitung). DVD-Video ; F, 26 min; verfügbare Sprachen: stumm. doi:10.3203/IWF/C-12740

Einzelnachweise

  1. a b c d e f g Antje HL Fischer, Thorsten Henrich, Detlev Arendt: The normal development of Platynereis dumerilii (Nereididae, Annelida). In: Frontiers in Zoology. 7, Nr. 1, 2010, S. 31. doi:10.1186/1742-9994-7-31. PMID 21192805. PMC 3027123 (freier Volltext).
  2. G. Read: Platynereis dumerilii (Audouin & Milne Edwards, 1834). In: Read, G.; Fauchald, K. (Ed.) (2015). In: World Register of Marine Species. Abgerufen am 26. November 2015.
  3. Jean Victoire Audouin, Henri Milne-Edwards: Néréide de Dumeril. Nereis Dumerilii. In: Recherches pour servir a l'histoire naturelle du littoral de la France, ou, Recueil de mémoires sur l'anatomie, la physiologie, la classification et les moeurs des animaux des nos côtes : ouvrage accompagné de planches faites d'après nature. 2, 1834, S. 196–199. doi:10.5962/bhl.title.43796.
  4. a b Pierre Fauvel: Annélides polychètes non-pélagiques provenant des campagnes de l'Hirondelle et de la Princesse-Alice (1885-1910). In: Résultats des campagnes scientifiques accompliés par le Prince Albert I. 46, 1914, S. 1–432.
  5. a b Albrecht Fischer, Adriaan Dorresteijn: The polychaete Platynereis dumerilii (Annelida): a laboratory animal with spiralian cleavage, lifelong segment proliferation and a mixed benthic/pelagic life cycle. In: BioEssays. 26, Nr. 3, März 2004, S. 314–325. doi:10.1002/bies.10409. PMID 14988933.
  6. Arendt Group - Evolution of the nervous system in bilateria - EMBL (en) In: www.embl.de. Abgerufen am 14. Juli 2017.
  7. a b A. N. Jha, T. H. Hutchinson, J. M. Mackay, B. M. Elliott, P. L. Pascoe, D. R. Dixon: The chromosomes Of Platynereis dumerilii (Polychaeta: Nereidae). In: Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 75, Nr. 03, 1995, S. 551. doi:10.1017/S002531540003900X.
  8. a b A. Giangrande: Polychaete zonation and its relation to algal distribution down a vertical cliff in the western Mediterranean (Italy): a structural analysis. In: Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 120, Nr. 3, September 1988, S. 263–276. doi:10.1016/0022-0981(88)90006-8.
  9. a b III, F. Graham Lewis, Allan W. Stoner: An Examination of Methods for Sampling Macrobenthos in Seagrass Meadows. In: Bulletin of Marine Science. 31, Nr. 1, 1. Januar 1981, S. 116–124.
  10. R.P.W.M. Jacobs, E.S. Pierson: Zostera marina spathes as a habitat for Platynereis dumerilii (Audouin and Milne-Edwards, 1834). In: Aquatic Botany. 6, Januar 1979, S. 403–406. doi:10.1016/0304-3770(79)90079-2.
  11. C. L. Huffard, S. von Thun, A. D. Sherman, K. Sealey, K. L. Smith: Pelagic Sargassum community change over a 40-year period: temporal and spatial variability. In: Marine Biology. 161, Nr. 12, 14. September 2014, S. 2735–2751. doi:10.1007/s00227-014-2539-y. PMC 4231207 (freier Volltext).
  12. M. L. Fine: Faunal variation on pelagic Sargassum. In: Marine Biology. 7, Nr. 2, Oktober 1970, S. 112–122. doi:10.1007/Bf00354914.
  13. R. B. Clark, A. Milne: The sublittoral fauna of two sandy bays on the Isle of Cumbrae, Firth of Clyde. In: Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 34, Nr. 01, 1955, S. 161. doi:10.1017/S0025315400008663.
  14. a b A. Giangrande, A. L. Delos, S. Fraschetti, L. Musco, M. Licciano, A. Terlizzi: Polychaete assemblages along a rocky shore on the South Adriatic coast (Mediterranean Sea): patterns of spatial distribution. In: Marine Biology. 143, Nr. 6, 1. Dezember 2003, S. 1109–1116. doi:10.1007/s00227-003-1162-0.
  15. Maria Cristina Gambi, Maurizio Lorenti, Giovanni F. Russo, Maria Beatrice Scipione, Valerio Zupo: Depth and Seasonal Distribution of Some Groups of the Vagile Fauna of the Posidonia oceanica Leaf Stratum: Structural and Trophic Analyses. In: Marine Ecology. 13, Nr. 1, März 1992, S. 17–39. doi:10.1111/j.1439-0485.1992.tb00337.x.
  16. STEFANO ALIANI, ROBERTO MELONI: Dispersal strategies of benthic species and water current variability in the Corsica Channel (Western Mediterranean). In: SCIENTIA MARINA. 63, Nr. 2, 1999, S. 137–145. doi:10.3989/scimar.1999.63n2137.
  17. A. Cram, S.M. Evans: Stability and lability in the evolution of behaviour in nereid polychaetes. In: Animal Behaviour. 28, Nr. 2, Mai 1980, S. 483–490. doi:10.1016/S0003-3472(80)80056-X.
  18. Victor Surugiu, Marc Feunteun: The structure and distribution of polychaete populations influenced by sewage from the Romanian Coast of the Black Sea. In: Analele Ştiinţifice ale Universităţii „Al. I. Cuza” Iaşi, s. Biologie animală. LIV, 2008.
  19. Gérard Bellan: Relationship of pollution to rocky substratum polychaetes on the French Mediterranean coast. In: Marine Pollution Bulletin. 11, Nr. 11, November 1980, S. 318–321. doi:10.1016/0025-326x(80)90048-X.
  20. L Musco, A Terlizzi, M Licciano, A Giangrande: Taxonomic structure and the effectiveness of surrogates in environmental monitoring: a lesson from polychaetes. In: Marine Ecology Progress Series. 383, 14. Mai 2009, S. 199–210. doi:10.3354/meps07989.
  21. Nirupama Ramanathan, Oleg Simakov, Christoph A. Merten, Detlev Arendt, Juan Carlos Molinero: Quantifying Preferences and Responsiveness of Marine Zooplankton to Changing Environmental Conditions using Microfluidics. In: PLOS ONE. 10, Nr. 10, 30. Oktober 2015, S. e0140553. doi:10.1371/journal.pone.0140553.
  22. a b Albrecht Fischer: Reproductive and developmental phenomena in annelids: a source of exemplary research problems. In: Hydrobiologia. 402, 1999, S. 1–20. doi:10.1023/A:1003719906378.
  23. Erich Zeeck, Tilman Harder, Manfred Beckmann: Uric acid: the sperm-release pheromone of the marine polychaete Platynereis dumerilii. In: Journal of Chemical Ecology. 24, Nr. 1, 1998, S. 13–22. doi:10.1023/A:1022328610423.
  24. a b Gáspár Jékely, Julien Colombelli, Harald Hausen, Keren Guy, Ernst Stelzer, François Nédélec, Detlev Arendt: Mechanism of phototaxis in marine zooplankton. In: Nature. 456, Nr. 7220, 20. November 2008, S. 395–399. doi:10.1038/nature07590.
  25. a b Birgit Rhode: Development and differentiation of the eye in Platynereis dumerilii (Annelida, Polychaeta). In: Journal of Morphology. 212, Nr. 1, April 1992, S. 71–85. doi:10.1002/jmor.1052120108.
  26. a b N. Randel, L. A. Bezares-Calderon, M. Gühmann, R. Shahidi, G. Jekely: Expression Dynamics and Protein Localization of Rhabdomeric Opsins in Platynereis Larvae. In: Integrative and Comparative Biology. 53, Nr. 1, 10. Mai 2013, S. 7–16. doi:10.1093/icb/ict046. PMID 23667045. PMC 3687135 (freier Volltext).
  27. a b Nadine Randel, Albina Asadulina, Luis A Bezares-Calderón, Csaba Verasztó, Elizabeth A Williams, Markus Conzelmann, Réza Shahidi, Gáspár Jékely: Neuronal connectome of a sensory-motor circuit for visual navigation. In: eLife. 3, 27. Mai 2014. doi:10.7554/eLife.02730.
  28. D. Arendt, K. Tessmar-Raible, H. Snyman, A.W. Dorresteijn, J. Wittbrodt: Ciliary Photoreceptors with a Vertebrate-Type Opsin in an Invertebrate Brain. In: Science. 306, Nr. 5697, 29. Oktober 2004, S. 869–871. doi:10.1126/science.1099955. PMID 15514158.
  29. Katja Seefeldt: Wo Darwin noch erschauderte - Ursprung des menschlichen Auges (Telepolis, 31. Oktober 2004)
  30. Keren Guy: Entwicklung und molekulare Charakterisierung der Erwachsenen- und Larvalaugen in Platynereis dumerilii (Polychaeta, Annelida, Lophotrochozoa) URN: urn:nbn:de:bsz:16-opus-93070 Universitätsbibliothek Heidelberg
  31. Hisao Tsukamoto, I-Shan Chen, Yoshihiro Kubo, Yuji Furutani: A ciliary opsin in the brain of a marine annelid zooplankton is ultraviolet-sensitive, and the sensitivity is tuned by a single amino acid residue. In: Journal of Biological Chemistry. 292, Nr. 31, 4. August 2017, S. 12971–12980. doi:10.1074/jbc.M117.793539. PMID 28623234.
  32. Csaba Verasztó, Martin Gühmann, Huiyong Jia, Vinoth Babu Veedin Rajan, Luis A Bezares-Calderón, Cristina Piñeiro-Lopez, Nadine Randel, Réza Shahidi, Nico K Michiels, Shozo Yokoyama, Kristin Tessmar-Raible, Gáspár Jékely: Ciliary and rhabdomeric photoreceptor-cell circuits form a spectral depth gauge in marine zooplankton. In: eLife. 7, 29. Mai 2018. doi:10.7554/eLife.36440. PMID 29809157.
  33. a b Martin Gühmann, Huiyong Jia, Nadine Randel, Csaba Verasztó, Luis A. Bezares-Calderón, Nico K. Michiels, Shozo Yokoyama, Gáspár Jékely: Spectral Tuning of Phototaxis by a Go-Opsin in the Rhabdomeric Eyes of Platynereis. In: Current Biology. 25, Nr. 17, August 2015, S. 2265–2271. doi:10.1016/j.cub.2015.07.017. PMID 26255845.
  34. Daisuke Kojima, Akihisa Terakita, Toru Ishikawa, Yasuo Tsukahara, Akio Maeda, Yoshinori Shichida: A Novel Go-mediated Phototransduction Cascade in Scallop Visual Cells. In: The Journal of Biological Chemistry. 272, Nr. 37, 12. September 1997, S. 22979–82. doi:10.1074/jbc.272.37.22979. PMID 9287291.
  35. MP Gomez, E Nasi: Light transduction in invertebrate hyperpolarizing photoreceptors: possible involvement of a Go-regulated guanylate cyclase. In: Journal of Neuroscience. 20, Nr. 14, 15. Juli 2000, S. 5254–63. PMID 10884309.
  36. María Claudia Ipucha, Cinthya Gomes Santos, Paulo Da Cunha Lana, Ives José Sbalqueiro: Cytogenetic characterization of seven South American species of nereididae (annelida: polychaeta): implications for the karyotypic evolution. In: BAG. Journal of basic and applied genetics. 18, Nr. 2, 2007.
  37. Juliane Zantke, Stephanie Bannister, Vinoth Babu Veedin Rajan, Florian Raible, Kristin Tessmar-Raible: Genetic and Genomic Tools for the Marine Annelid. In: Genetics. 197, Nr. 1, 7. Mai 2014, S. 19–31. doi:10.1534/genetics.112.148254. PMC 4012478 (freier Volltext).
  38. Florian Raible, Kristin Tessmar-Raible, Kazutoyo Osoegawa, Patrick Wincker, Claire Jubin, Guillaume Balavoine, David Ferrier, Vladimir Benes, Pieter de Jong, Jean Weissenbach, Peer Bork, Detlev Arendt: Vertebrate-Type Intron-Rich Genes in the Marine Annelid Platynereis dumerilii. In: Science. 310, Nr. 5752, 25. November 2005, , S. 1325–1326. doi:10.1126/science.1119089. PMID 16311335.
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Platynereis dumerilii: Brief Summary ( German )

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Platynereis dumerilii gehört zur Gruppe der Borstenwürmer. Die Art wurde zuerst in die Gattung Nereis eingeordnet und später Platynereis zugeordnet. Platynereis dumerilii lebt in gemäßigten bis tropischen Zonen in küstennahen marinen Gewässern, und kann an vielen Orten gefunden werden: Bei den Azoren, im Mittelmeer, in der Nordsee, im Ärmelkanal und im Atlantik bis runter zum Kap der Guten Hoffnung, im Schwarzen Meer, im Roten Meer, im Persischen Golf, im Japanischen Meer, im Pazifik und bei den Kerguelen. Platynereis dumerilii ist heute ein wichtiges Labortier, gilt als lebendes Fossil und wird für viele phylogenetische Untersuchungen als Modellorganismus angesehen. Platynereis dumerilii wird 3 bis 18 Monate alt, die Männchen werden 2 bis 3 cm lang, die Weibchen 3 bis 4 cm.

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Platynereis dumerilii

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Female epitoke of Platynereis dumerilii: Its body is filled with yellow eggs.[2]
Male epitoke of Platynereis dumerilii: Its frontal part is filled with white sperm, while its rear is red due to blood vessels.[2]

Platynereis dumerilii is a species of annelid polychaete worm.[3] It was originally placed into the genus Nereis[1] and later reassigned to the genus Platynereis.[4] Platynereis dumerilii lives in coastal marine waters from temperate to tropical zones. It can be found in a wide range from the Azores, the Mediterranean, in the North Sea, the English Channel, and the Atlantic down to the Cape of Good Hope, in the Black Sea, the Red Sea, the Persian Gulf, the Sea of Japan, the Pacific, and the Kerguelen Islands.[4] Platynereis dumerilii is today an important lab animal,[5] it is considered as a living fossil,[6][7][8] and it is used in many phylogenetic studies as a model organism.

Description

Platynereis dumerilii is a small marine ragworm: Males reach a length of 2 to 3 cm, while females reach a length of 3 to 4 cm.[9] Like a number of invertebrate phyla, Platynereis dumerilii has an axochord, a paired longitudinal muscle that displays striking similarities to the notochord regarding position, developmental origin, and expression profile.[10] Its early trochophore larva has a pair of the simplest eyes in the animal kingdom, each eye consists only of a photoreceptor cell and a pigment cell.[11]

Locomotion

P. dumerilii worms have a ciliated surface which beats synchronously to drive locomotion and fluid flow. Larvae have segmental multiciliated cells that regularly display spontaneous coordinated ciliary arrests, which compose the ciliomotor circuitry in the worms. Whole-body coordination of ciliary locomotion is performed by a "stop-and-go pacemaker system".[12]

As the worms develop, they use chaetae, and then parapodia, for locomotion. Unlike other polychaetes, in Platynereis larvae, the parapodia are used only for navigation while the cilia are responsible for propulsive force.[2]

Senses

Photoreceptor cells

Platynereis dumerilii larvae possess two kinds of photoreceptor cells: Rhabdomeric and ciliary photoreceptor cells.

The ciliary photoreceptor cells are located in the deep brain of the larva. They are not shaded by pigment and thus perceive non-directional light. The ciliary photoreceptor cells resemble molecularly and morphologically the rods and cones of the human eye. Additional, they express an ciliary opsin that is more similar to the visual ciliary opsins of vertebrate rods and cones than to the visual rhabdomeric opsins of invertebrates. Therefore, it is thought that the urbilaterian, the last common ancestor of mollusks, arthropods, and vertebrates already had ciliary photoreceptor cells.[13] The ciliary opsin is UV-sensitive (λmax = 383 nm),[14] and the ciliary photoreceptor cells react on non-directional UV-light by making the larvae swimming down. This forms a ratio-chromatic depth-gauge with phototaxis of the rhabdomeric photoreceptor cells of the eyes.[15]

A rhabdomeric photoreceptor cell forms with a pigment cell a simple eye.[16] A pair of these eyes mediate phototaxis in the early Platynereis dumerilii trochophore larva.[11] In the later nectochaete larva, phototaxis is mediated by the more complex adult eyes.[17] The adult eyes express at least three opsins: Two rhabdomeric opsins and a Go-opsin.[18][19] The three opsins there mediate phototaxis all the same way via depolarization,[19] even so a scallop Go-opsin is known to hyperpolarize.[20][21]

Chemical

P. dumerilii senses chemicals with four types of organs: The antennae, the palps, the nuchal organs, and the tentacular cirri. These organs detect food and chemical cues such as alcohols, esters, amino acids, and sugars.[22]

Among the four types, the antennae are the primary chemosensory organs and sense a broad range of chemicals, while the palps are specialized on taste, which means they detect food-related chemicals. The cirri are thin thread-like head appendages and are specialized in tactile sensation, but can also give spatial information from were a chemical cue is coming, since a single stimulus can elicit in the left and right cirrus a response at a different times.[22] The cirri also sense light: When they are shaded, the worm retreats rapidly into its tube to protect them. This behavior is called a shadow reflex.[23] The nuchal organ is a singular ciliated pit in P. dumerilii. Among annelids, nuchal organs are conserved and seem to have an important chemosensory function. However, what their exact function is, is still unclear.[22]

The signals from the four chemosensory organs are processed in a lateral region and in the mushroom bodies.[22] The mushroom bodies in annelids resemble those in insects by anatomy, morphology and gene expression. So probably, annelids and insects inherited mushroom bodies from their last common ancestor.[24]

Habitat

Platynereis dumerilii builds tubes on its substrate. The substrate may be algae-covered hard bottoms,[25] sea grass,[26][27] pelagic Sargassum rafts in the Sargasso Sea,[28][29] or even rotting plant debris.[30] Platynereis dumerilii commonly lives in depths of 0 to 5 meters,[31][32][26][25] and so is typical for shallow bright infra-littoral environments.[31] However, it has been also found on a buoy at 50 meters[33] and on rotting seaweed at 100 m.[34] It may also live in less favorable environments, like at thermal vents[35][36] or polluted areas near sewer outfall pipes.[37] It dominates polluted areas[38][39] and acidic areas with pH values around 6.5[40] fitting the preferred pH value of a subpopulation of late Platynereis dumerilii nectochaete larvae.[41] Larvae feed on plankton, and migrate vertically in the ocean in response to changes in light, causing a daily transport of biomass.[42]

Reproduction and Development

Platynereis dumerilii is dioecious, that means it has two separate sexes.[43] Changes in light are importantly linked to reproduction. The bristle worm is originally found in the Bay of Naples, where it displays reproductive synchrony. The adult worms rise en masse to the water surface a few days after the full moon, during a one- to two-hour dark portion of the night between sunset and moonrise. In the worm’s natural environment, it is important to synchronize spawning to increase the potential for gametes to meet and fertilize. By detecting nighttime lighting in accordance with the lunar cycle, the worms synchronize reproductive activity. Worms that make L-Cry protein are better able to detect appropriate light conditions and synchronize the release of gametes. In addition, the molecule r-Opsin is extremely sensitive to light, and appears to help detect moonrise. Some combination of signals from r-Opsin and L-Cry is believed to help the worms to coordinate rising at a common time to spawn.[44][45][46]

During mating, the male swims around the female while the female is swimming in small circles. Both release eggs and sperm into the water. This release is triggered by sexual pheromones. The eggs are then fertilized outside of the body in the water.[47] Like other Nereidids, Platynereis dumerilii has no segmental gonades, the oocytes mature freely swimming in the body cavity (coelom),[43] and stain the body of the mature female epitoke yellow.[2]

Platynereis dumerilii develops very stereotypically between batches and therefore time can be used to stage Platynereis dumerilii larvae. However, the temperature influences the speed of development greatly.[2] Therefore, the following developmental times are given with 18 °C as reference temperature:

After 24 hours, a fertilized egg gives rise to a trochophore larva. At 48 hours, the trochophore larva becomes a metatrochophore larva.[2] Both trochophore and metatrochophore swim with a ring of cilia in the water and are positively phototactic.[11] The metatrochophore has, beside the larval eyes, already the anlagen for the more complex adult eyes of the adult worm.[16][18] A day later, at 72 hours after fertilization, the metatrochophore larva becomes a nectochaete larva. The nectochaete larva already has three segments, each with a pair of parapodia bearing chaetae, which serve for locomotion.[2] The nectochaete larva can switch from positive to negative phototaxis.[17] After five to seven days, the larvae start feeding and develop on their own speed, depending on food supply. After three to four weeks, when six segments have formed, the head is formed.[2]

Normal development is subdivided into 16 stages.[2] Platynereis dumerilii lives for 3 up to 18 months[5] with an average lifespan of seven months. P. dumerilii reproduces only once,[42] and dies after delivering its gametes.[2]

Genome

The genome of Platynereis dumerilii is diploid (2n chromosomes) with a haploid set of n = 14 chromosomes.[9][48] It contains approximately 1 Gbp (giga base pairs) or 109 base pairs.[49] This genome size is close to the average observed for other animals. However, compared to many classical invertebrate molecular model organisms, this genome size is rather large and therefore it is a challenge to identify gene regulatory elements that can be far away from the corresponding promoter. But it is intron rich unlike those of Drosophila melanogaster and Caenorhabditis elegans and thus closer to vertebrate genomes including the human genome.[50]

Bristle worms contain the complex protein haemoglobin, found in vertebrates, annelids (e.g. earthworms), molluscs (e.g. pond snails) and crustaceans (e.g. daphnia). It was once believed that haemoglobin must have evolved multiple times to be a feature of such different species.Comparing bristle worms with other red blooded species suggests that all forms of haemoglobins are derived from a single ancestral gene, cytoglobin.[51][52]

References

  1. ^ a b Audouin, Jean Victoire; Milne-Edwards, Henri (1834). "Néréide de Dumeril. Nereis Dumerilii". Recherches Pour Servir à l'Histoire Naturelle du Littoral de la France, ou, Recueil de Mémoires sur l'Anatomie, la Physiologie, la Classification et les Moeurs des Animaux des Nos Côtes: Ouvrage Accompagné de Planches Faites d'Après Nature. 2: 196–199. doi:10.5962/bhl.title.43796.
  2. ^ a b c d e f g h i j Fischer, Antje HL; Henrich, Thorsten; Arendt, Detlev (2010). "The normal development of Platynereis dumerilii (Nereididae, Annelida)". Frontiers in Zoology. 7 (1): 31. doi:10.1186/1742-9994-7-31. PMC 3027123. PMID 21192805.
  3. ^ Read, G. "Platynereis dumerilii (Audouin & Milne Edwards, 1834). In: Read, G.; Fauchald, K. (Ed.) (2015)". World Register of Marine Species. Retrieved 26 November 2015.
  4. ^ a b Fauvel, Pierre (1914). "Annélides polychètes non-pélagiques provenant des campagnes de l'Hirondelle et de la Princesse-Alice (1885-1910)". Résultats des Campagnes Scientifiques Accompliés Par le Prince Albert I. 46: 1–432.
  5. ^ a b Fischer, Albrecht; Dorresteijn, Adriaan (March 2004). "The polychaete Platynereis dumerilii (Annelida): a laboratory animal with spiralian cleavage, lifelong segment proliferation and a mixed benthic/pelagic life cycle". BioEssays. 26 (3): 314–325. doi:10.1002/bies.10409. PMID 14988933.
  6. ^ "Introduction - Encyclopedia of Life". Encyclopedia of Life. Retrieved 14 July 2017.
  7. ^ "Living Fossil Platynereis dumerilii: Unraveling the first steps of eye evolution". thebiologyplace. 3 December 2008. Retrieved 14 July 2017.
  8. ^ "Arendt Group - Evolution of the nervous system in bilateria - EMBL". www.embl.de. Retrieved 14 July 2017.
  9. ^ a b Jha, A. N.; Hutchinson, T. H.; Mackay, J. M.; Elliott, B. M.; Pascoe, P. L.; Dixon, D. R. (1995). "The chromosomes Of Platynereis dumerilii (Polychaeta: Nereidae)". Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 75 (3): 551. doi:10.1017/S002531540003900X. S2CID 84763134.
  10. ^ Lauri, Antonella; Brunet, Thibaut; Handberg-Thorsager, Mette; Fischer, Antje H. L.; Simakov, Oleg; Steinmetz, Patrick R. H.; Tomer, Raju; Keller, Philipp J.; Arendt, Detlev (2014-09-12). "Development of the annelid axochord: Insights into notochord evolution". Science. 345 (6202): 1365–1368. Bibcode:2014Sci...345.1365L. doi:10.1126/science.1253396. ISSN 0036-8075. PMID 25214631. S2CID 20045151.
  11. ^ a b c Jékely, Gáspár; Colombelli, Julien; Hausen, Harald; Guy, Keren; Stelzer, Ernst; Nédélec, François; Arendt, Detlev (20 November 2008). "Mechanism of phototaxis in marine zooplankton". Nature. 456 (7220): 395–399. Bibcode:2008Natur.456..395J. doi:10.1038/nature07590. PMID 19020621.
  12. ^ Verasztó, Csaba; Ueda, Nobuo; Bezares-Calderón, Luis A; Panzera, Aurora; Williams, Elizabeth A; Shahidi, Réza; Jékely, Gáspár (2017-05-16). Sengupta, Piali (ed.). "Ciliomotor circuitry underlying whole-body coordination of ciliary activity in the Platynereis larva". eLife. 6: e26000. doi:10.7554/eLife.26000. ISSN 2050-084X. PMC 5531833. PMID 28508746.
  13. ^ Arendt, D.; Tessmar-Raible, K.; Snyman, H.; Dorresteijn, A.W.; Wittbrodt, J. (29 October 2004). "Ciliary Photoreceptors with a Vertebrate-Type Opsin in an Invertebrate Brain". Science. 306 (5697): 869–871. Bibcode:2004Sci...306..869A. doi:10.1126/science.1099955. PMID 15514158. S2CID 2583520.
  14. ^ Tsukamoto, Hisao; Chen, I-Shan; Kubo, Yoshihiro; Furutani, Yuji (4 August 2017). "A ciliary opsin in the brain of a marine annelid zooplankton is ultraviolet-sensitive, and the sensitivity is tuned by a single amino acid residue". Journal of Biological Chemistry. 292 (31): 12971–12980. doi:10.1074/jbc.M117.793539. PMC 5546036. PMID 28623234.
  15. ^ Verasztó, Csaba; Gühmann, Martin; Jia, Huiyong; Rajan, Vinoth Babu Veedin; Bezares-Calderón, Luis A; Piñeiro-Lopez, Cristina; Randel, Nadine; Shahidi, Réza; Michiels, Nico K; Yokoyama, Shozo; Tessmar-Raible, Kristin; Jékely, Gáspár (29 May 2018). "Ciliary and rhabdomeric photoreceptor-cell circuits form a spectral depth gauge in marine zooplankton". eLife. 7. doi:10.7554/eLife.36440. PMC 6019069. PMID 29809157.
  16. ^ a b Rhode, Birgit (April 1992). "Development and differentiation of the eye inPlatynereis dumerilii (Annelida, Polychaeta)". Journal of Morphology. 212 (1): 71–85. doi:10.1002/jmor.1052120108. PMID 29865584. S2CID 46930876.
  17. ^ a b Randel, Nadine; Asadulina, Albina; Bezares-Calderón, Luis A; Verasztó, Csaba; Williams, Elizabeth A; Conzelmann, Markus; Shahidi, Réza; Jékely, Gáspár (27 May 2014). "Neuronal connectome of a sensory-motor circuit for visual navigation". eLife. 3. doi:10.7554/eLife.02730. PMC 4059887. PMID 24867217.
  18. ^ a b Randel, N.; Bezares-Calderon, L. A.; Gühmann, M.; Shahidi, R.; Jekely, G. (2013-05-10). "Expression Dynamics and Protein Localization of Rhabdomeric Opsins in Platynereis Larvae". Integrative and Comparative Biology. 53 (1): 7–16. doi:10.1093/icb/ict046. PMC 3687135. PMID 23667045.
  19. ^ a b Gühmann, Martin; Jia, Huiyong; Randel, Nadine; Verasztó, Csaba; Bezares-Calderón, Luis A.; Michiels, Nico K.; Yokoyama, Shozo; Jékely, Gáspár (August 2015). "Spectral Tuning of Phototaxis by a Go-Opsin in the Rhabdomeric Eyes of Platynereis". Current Biology. 25 (17): 2265–2271. doi:10.1016/j.cub.2015.07.017. PMID 26255845.
  20. ^ Kojima, Daisuke; Terakita, Akihisa; Ishikawa, Toru; Tsukahara, Yasuo; Maeda, Akio; Shichida, Yoshinori (12 September 1997). "A Novel Go-mediated Phototransduction Cascade in Scallop Visual Cells". The Journal of Biological Chemistry. 272 (37): 22979–82. doi:10.1074/jbc.272.37.22979. PMID 9287291.
  21. ^ Gomez, MP; Nasi, E (15 July 2000). "Light transduction in invertebrate hyperpolarizing photoreceptors: possible involvement of a Go-regulated guanylate cyclase". The Journal of Neuroscience. 20 (14): 5254–63. doi:10.1523/JNEUROSCI.20-14-05254.2000. PMC 6772339. PMID 10884309.
  22. ^ a b c d Chartier, Thomas F.; Deschamps, Joran; Dürichen, Wiebke; Jékely, Gáspár; Arendt, Detlev (2018). "Whole-head recording of chemosensory activity in the marine annelid Platynereis dumerilii". Open Biology. 8 (10): 180139. doi:10.1098/rsob.180139. PMC 6223215. PMID 30381362.
  23. ^ Ayers, Thomas; Tsukamoto, Hisao; Gühmann, Martin; Veedin Rajan, Vinoth Babu; Tessmar-Raible, Kristin (2018-04-18). "A Go-type opsin mediates the shadow reflex in the annelid Platynereis dumerilii". BMC Biology. 16 (1): 41. doi:10.1186/s12915-018-0505-8. ISSN 1741-7007. PMC 5904973. PMID 29669554.
  24. ^ Wolff, Gabriella H.; Strausfeld, Nicholas J. (January 2015). "Genealogical Correspondence of Mushroom Bodies across Invertebrate Phyla". Current Biology. 25 (1): 38–44. doi:10.1016/j.cub.2014.10.049. PMID 25532890. S2CID 258754.{{cite journal}}: CS1 maint: date and year (link)
  25. ^ a b Giangrande, A. (September 1988). "Polychaete zonation and its relation to algal distribution down a vertical cliff in the western Mediterranean (Italy): a structural analysis". Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 120 (3): 263–276. doi:10.1016/0022-0981(88)90006-8.
  26. ^ a b Lewis, III, F. Graham; Stoner, Allan W. (1 January 1981). "An Examination of Methods for Sampling Macrobenthos in Seagrass Meadows". Bulletin of Marine Science. 31 (1): 116–124.
  27. ^ Jacobs, R.P.W.M.; Pierson, E.S. (January 1979). "Zostera marina spathes as a habitat for Platynereis dumerilii (Audouin and Milne-Edwards, 1834)". Aquatic Botany. 6: 403–406. doi:10.1016/0304-3770(79)90079-2.
  28. ^ Huffard, C. L.; von Thun, S.; Sherman, A. D.; Sealey, K.; Smith, K. L. (14 September 2014). "Pelagic Sargassum community change over a 40-year period: temporal and spatial variability". Marine Biology. 161 (12): 2735–2751. doi:10.1007/s00227-014-2539-y. PMC 4231207. PMID 25414525.
  29. ^ Fine, M. L. (October 1970). "Faunal variation on pelagic Sargassum". Marine Biology. 7 (2): 112–122. doi:10.1007/Bf00354914. S2CID 84660433.
  30. ^ Clark, R. B.; Milne, A. (1955). "The sublittoral fauna of two sandy bays on the Isle of Cumbrae, Firth of Clyde" (PDF). Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 34 (1): 161. doi:10.1017/S0025315400008663. S2CID 250949017.
  31. ^ a b Giangrande, A.; Delos, A. L.; Fraschetti, S.; Musco, L.; Licciano, M.; Terlizzi, A. (1 December 2003). "Polychaete assemblages along a rocky shore on the South Adriatic coast (Mediterranean Sea): patterns of spatial distribution". Marine Biology. 143 (6): 1109–1116. doi:10.1007/s00227-003-1162-0. S2CID 85293536.
  32. ^ Gambi, Maria Cristina; Lorenti, Maurizio; Russo, Giovanni F.; Scipione, Maria Beatrice; Zupo, Valerio (March 1992). "Depth and Seasonal Distribution of Some Groups of the Vagile Fauna of the Posidonia oceanica Leaf Stratum: Structural and Trophic Analyses". Marine Ecology. 13 (1): 17–39. Bibcode:1992MarEc..13...17G. doi:10.1111/j.1439-0485.1992.tb00337.x.
  33. ^ ALIANI, STEFANO; MELONI, ROBERTO (1999). "Dispersal strategies of benthic species and water current variability in the Corsica Channel (Western Mediterranean)". Scientia Marina. 63 (2): 137–145. doi:10.3989/scimar.1999.63n2137.
  34. ^ Cram, A.; Evans, S.M. (May 1980). "Stability and lability in the evolution of behaviour in nereid polychaetes". Animal Behaviour. 28 (2): 483–490. doi:10.1016/S0003-3472(80)80056-X. S2CID 53159295.
  35. ^ Giménez, F.; Marín, A. (1991). "Los Anelidos poliquetos de una solfatara submarina en el Golfo de Napoles". Anales de Biología. 17: 143–151.
  36. ^ Lucey, Noelle Marie; Lombardi, Chiara; DeMarchi, Lucia; Schulze, Anja; Gambi, Maria Cristina; Calosi, Piero (9 July 2015). "To brood or not to brood: Are marine invertebrates that protect their offspring more resilient to ocean acidification?". Scientific Reports. 5 (1): 12009. Bibcode:2015NatSR...512009L. doi:10.1038/srep12009. PMC 4648422. PMID 26156262.
  37. ^ Surugiu, Victor; Feunteun, Marc (2008). "The structure and distribution of polychaete populations influenced by sewage from the Romanian Coast of the Black Sea". Analele Ştiinţifice Ale Universităţii "Al. I. Cuza" Iaşi, S. Biologie Animală. LIV.
  38. ^ Bellan, Gérard (November 1980). "Relationship of pollution to rocky substratum polychaetes on the French Mediterranean coast". Marine Pollution Bulletin. 11 (11): 318–321. doi:10.1016/0025-326x(80)90048-X.
  39. ^ Musco, L; Terlizzi, A; Licciano, M; Giangrande, A (14 May 2009). "Taxonomic structure and the effectiveness of surrogates in environmental monitoring: a lesson from polychaetes". Marine Ecology Progress Series. 383: 199–210. Bibcode:2009MEPS..383..199M. doi:10.3354/meps07989.
  40. ^ Ricevuto, Elena; Kroeker, K. J.; Ferrigno, F.; Micheli, F.; Gambi, M. C. (24 October 2014). "Spatio-temporal variability of polychaete colonization at volcanic CO2 vents indicates high tolerance to ocean acidification". Marine Biology. 161 (12): 2909–2919. doi:10.1007/s00227-014-2555-y. S2CID 84767827.
  41. ^ Ramanathan, Nirupama; Simakov, Oleg; Merten, Christoph A.; Arendt, Detlev; Molinero, Juan Carlos (30 October 2015). "Quantifying Preferences and Responsiveness of Marine Zooplankton to Changing Environmental Conditions using Microfluidics". PLOS ONE. 10 (10): e0140553. Bibcode:2015PLoSO..1040553R. doi:10.1371/journal.pone.0140553. PMC 4627805. PMID 26517120.
  42. ^ a b "A slightly different worm – Platynereis dumerilii". www.gesundheitsindustrie-bw.de. Retrieved 2019-12-08.
  43. ^ a b Fischer, Albrecht (1999). "Reproductive and developmental phenomena in annelids: a source of exemplary research problems". Hydrobiologia. 402: 1–20. doi:10.1023/A:1003719906378. S2CID 38397888.
  44. ^ Markandeya, Virat (22 February 2023). "How lunar cycles guide the spawning of corals, worms and more". Knowable Magazine. Annual Reviews. doi:10.1146/knowable-022223-2. Retrieved 6 March 2023.
  45. ^ Häfker, N. Sören; Andreatta, Gabriele; Manzotti, Alessandro; Falciatore, Angela; Raible, Florian; Tessmar-Raible, Kristin (16 January 2023). "Rhythms and Clocks in Marine Organisms". Annual Review of Marine Science. 15 (1): 509–538. doi:10.1146/annurev-marine-030422-113038. ISSN 1941-1405. Retrieved 6 March 2023.
  46. ^ Poehn, Birgit; Krishnan, Shruthi; Zurl, Martin; Coric, Aida; Rokvic, Dunja; Häfker, N. Sören; Jaenicke, Elmar; Arboleda, Enrique; Orel, Lukas; Raible, Florian; Wolf, Eva; Tessmar-Raible, Kristin (5 September 2022). "A Cryptochrome adopts distinct moon- and sunlight states and functions as sun- versus moonlight interpreter in monthly oscillator entrainment". Nature Communications. 13 (1): 5220. doi:10.1038/s41467-022-32562-z. ISSN 2041-1723.
  47. ^ Zeeck, Erich; Harder, Tilman; Beckmann, Manfred (1998). "Uric acid: the sperm-release pheromone of the marine polychaete Platynereis dumerilii". Journal of Chemical Ecology. 24 (1): 13–22. doi:10.1023/A:1022328610423. S2CID 42318049.
  48. ^ Ipucha, María Claudia; Santos, Cinthya Gomes; Lana, Paulo Da Cunha; Sbalqueiro, Ives José (2007). "Cytogenetic characterization of seven South American species of nereididae (annelida: polychaeta): implications for the karyotypic evolution". BAG. Journal of Basic and Applied Genetics. 18 (2).
  49. ^ Zantke, Juliane; Bannister, Stephanie; Rajan, Vinoth Babu Veedin; Raible, Florian; Tessmar-Raible, Kristin (7 May 2014). "Genetic and Genomic Tools for the Marine Annelid". Genetics. 197 (1): 19–31. doi:10.1534/genetics.112.148254. PMC 4012478. PMID 24807110.
  50. ^ Raible, Florian; Tessmar-Raible, Kristin; Osoegawa, Kazutoyo; Wincker, Patrick; Jubin, Claire; Balavoine, Guillaume; Ferrier, David; Benes, Vladimir; Jong, Pieter de; Weissenbach, Jean; Bork, Peer; Arendt, Detlev (25 November 2005). "Vertebrate-Type Intron-Rich Genes in the Marine Annelid Platynereis dumerilii". Science. 310 (5752): 1325–1326. Bibcode:2005Sci...310.1325R. doi:10.1126/science.1119089. ISSN 0036-8075. PMID 16311335. S2CID 23653039.
  51. ^ "A single gene 'invented' haemoglobin several times". EurekAlert!. 29 December 2020. Retrieved 13 March 2023.
  52. ^ Song, Solène; Starunov, Viktor; Bailly, Xavier; Ruta, Christine; Kerner, Pierre; Cornelissen, Annemiek J. M.; Balavoine, Guillaume (December 2020). "Globins in the marine annelid Platynereis dumerilii shed new light on hemoglobin evolution in bilaterians". BMC Evolutionary Biology. 20 (1): 165. doi:10.1186/s12862-020-01714-4. Retrieved 13 March 2023.

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Platynereis dumerilii: Brief Summary

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Female epitoke of Platynereis dumerilii: Its body is filled with yellow eggs. Male epitoke of Platynereis dumerilii: Its frontal part is filled with white sperm, while its rear is red due to blood vessels.

Platynereis dumerilii is a species of annelid polychaete worm. It was originally placed into the genus Nereis and later reassigned to the genus Platynereis. Platynereis dumerilii lives in coastal marine waters from temperate to tropical zones. It can be found in a wide range from the Azores, the Mediterranean, in the North Sea, the English Channel, and the Atlantic down to the Cape of Good Hope, in the Black Sea, the Red Sea, the Persian Gulf, the Sea of Japan, the Pacific, and the Kerguelen Islands. Platynereis dumerilii is today an important lab animal, it is considered as a living fossil, and it is used in many phylogenetic studies as a model organism.

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Platynereis dumerilii ( French )

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Platynereis dumerilii est une espèce de vers annélides marins appartenant à la phylogénie des lophotrochozoaires[2] qui constitue la troisième grande branche des bilatériens (avec les deutérostomiens et les ecdyzozoaires).

Il possède des caractéristiques anatomiques supposées être déjà présentes chez l’Urbilatérien (dernier ancêtre commun aux bilatériens). Il peut être trouvé dans les zones marines côtières tempérées à tropicales. Un dimorphisme sexuel existe chez Platynereis dumerilii : les femelles sont de couleur jaune, tandis que les mâles ont leur côté antérieur blanc et leur côté postérieur rouge à l'âge adulte[3]. Cet animal constitue un bon organisme modèle en génétique et en biologie cellulaire et animale. La longueur de cet organisme est comprise entre 3 et 4 cm chez les femelles, et entre 2 et 3 cm chez les mâles[4].

Morphologie de Platynereis dumerilii

L’organisation de Platynereis dumerilii est segmentale[5]. Elle comprend :

  • La tête, nantie de 4 yeux présents sur une structure appelée prostomium, d'où partent également deux tentacules et deux palpes. Sous le prostomium, on trouve 4 paires de cirres tentaculaires, et en arrière le péristomium, qui entoure la bouche.
  • Une répétition d’anneaux stéréotypiques bordés d’appendices pairs appelés parapodes (le nombre de répétition est variable d’un individu à l’autre, de par le phénomène d’élongation postérieure qui a lieu tout au long de la vie de Platynereis dumerilii)
  • La queue, qui se termine par une zone appelée pygidium se prolongeant par deux cirres pygidiaux (cirres sensoriels).

Développement et reproduction

Platynereis dumerilii est un animal à sexes séparés. Au cours de son développement, il passe tout d'abord par un stade dit juvénile puis il subit une maturation sexuelle observable à travers une modification du phénotype. Les mâles vont perdre leur tube digestif et accumuler des spermatozoïdes tout au long de la maturation sexuelle, observable par la couleur blanche au niveau antérieur. Les femelles, quant à elles, vont avoir une accumulation d'ovules dans la cavité abdominale au cours du temps observable par la coloration jaune de l'animal.

La maturation sexuelle de Platynereis dumerilii est circalunaire, autrement dit elle dépend des différentes phases de la lune. En effet, la proportion d'animaux atteignant la maturité sexuelle est maximale après une nouvelle lune, à contrario elle est minimale durant les périodes de pleine lune. À la suite de la maturation sexuelle, s'engage une danse nuptiale entre le mâle et la femelle. Le mâle tourne autour de la femelle pendant que cette dernière nage de manière circulaire. Le mâle libère ses spermatozoïdes et la femelle ses ovules dans le milieu : la reproduction est dite externe. Après relargage des gamètes mâles et femelles, les deux partenaires meurent d'épuisement. Durant la reproduction sexuelle entre un mâle et une femelle, il est possible d'avoir plusieurs centaines d’œuf.

Après fécondation, mise en place d'une cellule œuf d'environ 160 µm qui se développe en passant par un stade planctonique (ne luttant pas contre le courant), un stade benthique (où elle se retrouvera plus en profondeur), un stade tubicole et un stade pélagique après la maturation sexuelle.

Stade larvaire

Les larves de Platynereis dumerilii possèdent deux types de cellules photoréceptrices[6] : les cellules photoréceptrices rhabdomériques et ciliaires.

Les cellules photoréceptrices ciliaires sont situées dans le cerveau profond de la larve. Elles ne sont pas ombragées par le pigment et perçoivent ainsi la lumière de manière non directionnelle. On note une ressemblance morphologique et moléculaire entre les cellules photoréceptrices ciliaires et les photorécepteurs présents au niveau de l'œil humain.

De plus, elles expriment une opsine plus proche des opsines ciliaires visuelles des bâtonnets et des cônes des vertébrés que des opsines rhabdomériques visuelles des invertébrés. Par conséquent, on pense que l'urbilaterien, le dernier ancêtre commun des mollusques, des arthropodes et des vertébrés avait déjà des cellules photoréceptrices ciliaires[7]. Une cellule photoréceptrice rhabdomérique forme avec une cellule pigmentaire un œil simple[8].

Après éclosion, les larves ont un comportement particulier durant la phase larvaire. Elles appartiennent au plancton, ensemble d'organismes incapable de lutter contre la houle (le mouvement ondulatoire de la surface de la mer). Cependant la larve n’est pas totalement passive, en effet à 24 heures, elle devient phototactique[9]. Lorsqu’il y a émission d'une source lumineuse à un endroit précis, les larves sont attirées et se déplacent dans la direction lumineuse. Ce comportement est très important pour ces larves qui doivent rester près de la surface de l’eau le plus longtemps possible. Au stade 72 heures les larves deviennent benthiques ; elles tombent dans les fonds marins et deviennent lucifuges, c’est-à-dire qu’elles fuient la lumière. Elles se déplacent alors vers des endroits plus sombres.

Génome de Platynereis dumerilii

La taille du génome de Platynereis dumerilii est d'environ 1 Gpb (giga paires de bases) soit 109 paires de bases. Cette taille de génome se rapproche de la moyenne observée pour les métazoaires eucaryotes. Cependant, en comparaison à de nombreuses espèces de modèles moléculaires d'invertébrés classiques, cette taille de génome est plutôt grande et représente par conséquent un défi pour l'identification d'éléments régulateurs de gènes qui peuvent être situés à des distances considérables du promoteur correspondant.

Il s'agit d'un génome diploïde (2n chromosomes) avec un jeu de n = 14 chromosomes. Les efforts conjoints de séquençage de la communauté scientifique ont généré un génome de référence à couverture élevée, pour cet organisme, dérivé de l'acide désoxyribonucléique des spermatozoïdes des vers mâles de la lignée FL2[4].

Organisme modèle - Intérêt scientifique

Platynereis dumerilii est un organisme modèle en biologie et en génétique car c'est un organisme peu volumineux avec une facilité d'entretien. En laboratoire, l'élevage de platynereis se fait dans des chambres dans lesquelles il est possible de régler la lumière pour reproduire les différentes phases de la lune. L'alimentation se fait à l'aide d'épinards bio (les pesticides étant mortels pour cet organisme). Ils sont conservés dans des bacs d'eau de mer.

Platynereis dumerilii est utilisé dans différents domaines :

  • Étude du comportement planctonique : La larve à 24 heures est de type plancton permettant l'étude comportementale du plancton.
  • Écologie : La présence de Platynereis dumerilii ou non dans le milieu marin permet d'indiquer si le milieu est sain ou non (présence de pesticide ou non).
  • Développement - EVO-DEVO : Platynereis est un bilatérien proche des deutérostomiens (vertébrés) phylogénétiquement ceci permet d'étudier des caractères/gènes qui pourraient être aussi présents chez d'autres clades.
  • Neuro-endrocrinologie : platynereis est un organisme possédant un grand nombre d'hormones et de neurotransmetteurs commun avec les vertébrés ce qui rend son étude intéressante pour la comparaison avec d'autres bilatériens.
  • Régénération : L'organisme a une capacité de régénération. Cette régénération est visible en laboratoire par une ablation de la queue, à la suite de cela il y régénération d’une zone d'addition des segments.
  • Chronobiologie : platynereis suit le rythme circadien et sa maturation sexuelle est contrôlée par les phases lunaires (rythme circalunaire).

Bien qu'il s'agisse d'un organisme modèle assez récent, de par son intérêt en sciences et sa facilité de manipulation, de nombreuses techniques ont été développées pour des analyses au niveau :

  • De l'organisme et de la morphologie
  • Du comportement
  • Cellulaire : lignage possible car embryon transparent
  • Génétique

Notes et références

  1. Jean Victoire Audouin et Henri Milne-Edwards, « Néréide de Dumeril. Nereis Dumerilii », Recherches pour servir a l'histoire naturelle du littoral de la France, ou, Recueil de mémoires sur l'anatomie, la physiologie, la classification et les mœurs des animaux des nos côtes : ouvrage accompagné de planches faites d'après nature, vol. 2,‎ 1834, p. 196–199 (DOI , lire en ligne, consulté le 7 octobre 2015)
  2. Florian Raible et Kristin Tessmar-Raible, « Platynereis dumerilii », Current Biology, vol. 24, no 15,‎ 4 août 2014, R676–R677 (ISSN , DOI , lire en ligne, consulté le 10 avril 2018)
  3. http://www.efor.fr/pages/organisms/?id=5
  4. a et b A. N. Jha, T. H. Hutchinson, J. M. Mackay, B. M. Elliott, P. L. Pascoe et D. R. Dixon, « The chromosomes Of Platynereis dumerilii (Polychaeta: Nereidae) », Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, vol. 75, no 03,‎ 1995, p. 551 (DOI )
  5. http://ssaft.com/Blog/dotclear/?post/2016/03/24/Observation-Microscopique-Platynereis-dumerilii
  6. Antje HL Fischer, Thorsten Henrich et Detlev Arendt, « The normal development of Platynereis dumerilii (Nereididae, Annelida) », Frontiers in Zoology, vol. 7, no 1,‎ 2010, p. 31 (PMID , PMCID , DOI )
  7. D. Arendt, K. Tessmar-Raible, H. Snyman, A.W. Dorresteijn et J. Wittbrodt, « Ciliary Photoreceptors with a Vertebrate-Type Opsin in an Invertebrate Brain », Science, vol. 306, no 5697,‎ 29 octobre 2004, p. 869–871 (PMID , DOI )
  8. Birgit Rhode, « Development and differentiation of the eye inPlatynereis dumerilii (Annelida, Polychaeta) », Journal of Morphology, vol. 212, no 1,‎ avril 1992, p. 71–85 (DOI )
  9. Gáspár Jékely, Julien Colombelli, Harald Hausen, Keren Guy, Ernst Stelzer, François Nédélec et Detlev Arendt, « Mechanism of phototaxis in marine zooplankton », Nature, vol. 456, no 7220,‎ 20 novembre 2008, p. 395–399 (DOI )

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Platynereis dumerilii: Brief Summary ( French )

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Platynereis dumerilii est une espèce de vers annélides marins appartenant à la phylogénie des lophotrochozoaires qui constitue la troisième grande branche des bilatériens (avec les deutérostomiens et les ecdyzozoaires).

Il possède des caractéristiques anatomiques supposées être déjà présentes chez l’Urbilatérien (dernier ancêtre commun aux bilatériens). Il peut être trouvé dans les zones marines côtières tempérées à tropicales. Un dimorphisme sexuel existe chez Platynereis dumerilii : les femelles sont de couleur jaune, tandis que les mâles ont leur côté antérieur blanc et leur côté postérieur rouge à l'âge adulte. Cet animal constitue un bon organisme modèle en génétique et en biologie cellulaire et animale. La longueur de cet organisme est comprise entre 3 et 4 cm chez les femelles, et entre 2 et 3 cm chez les mâles.

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Platynereis dumerilii ( Latin )

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Platynereis dumerilii ad Annelida attinet.[2] Primum in genere Nereis posita[1] et postea in Platynereis reposita erat.[3] Platynereis dumerilii in maritimis aquis a zona temperata ad tropicae vivit. Potest inveniri ad Azores, in Mediterraneum, Mare Germanicum, Mare Britannicum, et Atlanticum; ac ad Promunturium Bonae Spei, in Mare Nigrum, Mare Rubrum, Sinum persicum, Mare Iaponicum, Pacifici, ad Kerguelen Insulis.[3] Platynereis dumerilii hodie est animal grave laboratorii,[4] acque quam vivum fossile consideratur[5][6][7], et in multis studiis phylogeneticae quam instar animantem usa est. Platynereis dumerilii 3 ad 18 mensis vetus fit.[4] Mares 2 ad 3 cm longi fiunt, dum feminae 3 ad 4 cm longae fiunt.[8]

Reproductio et Desveloppamentum

Platynereis dumerilii est dioeciosus, id est duabus sexu habeat:[9] Inter coniugium, mas circa feminam natat, et femina in circis parvis natat. Utrique ova et sperma in aquam dimittunt. Hoc a pheromona sexualia inducitur. Ova ergo in aqua extra corpus fertilizatur.[10] Platynereis dumerilii, sicut aliae Nereididae, segmentariam gonades non habet, ova libere natantes in cavitate corporis (coelom) maturat.[9]

Platynereis dumerilii inter individua stereotypice desveloppat, et ideo gradus larvae Platynereidis dumerilii a tempore determinari potest. Autem, temperatura celeritatem valde determinat.[11] Ergo haec tempora desveloppamenti ad temperaturam 18 °C referuntur:

Ad 24 horas post fertilizationem, ovum fit larva trochophora. Ad 48 horas, trochophora fit metatrochophora.[11] Utraeque trochophora et metatrochophora cum anulo ciliorum in aqua natant, et positive phototacticae sunt.[12] Una die postea, ad 72 horas post fertilizationem, metatrochophora fit larva nectochaeta. Ea iam tria segmenta habet, quidque cum pare parapodiorum qua ferrunt chaetas, quae pro motui serviunt.[11] Nectochaeta a photoaxe positiva ad negativam mutare potest.[13] Post quinque ad septem dies, larvae pascere initiant et sua celeritate desveloppant, prout copia cibi permittet. Post tres ad quatuor septimanas, sex segmentis formatis caput formatur.[11]

Cellulis Photoreceptores

Larvae Platynereidis dumerilii duo genera cellularum photoreceptorum habent: Cellulae photoreceptorum rhabdomericae et ciliares.

Cellulae photoreceptorum ciliares in cerebro alto larvae sunt. A pigmento non umbrantur et ergo lucem undique percipiunt. Cellulae photoreceptorum ciliares similem sunt moleculariter et morphologicaliter virgis et conis oculi humani. Praeteria opsinum exprimunt quod magis similem est opsinis ciliaribus visualis vertebratorum, quam illis opsinis rhabdomeris invertebratorum. Igitur cogitatur, ut urbilaterium, proavus communis ultimus molluscorum, arthropodorum, et vertebratorum, iam cellulas photoreceptorum ciliares habuerint.[14]

Cellula photoreceptorum rhabdomerica cum cellula pigmentorum format oculum simplicem. Par horum oculorum phototaxim in larva trochophora matura Platynereidis dumerilii mediant.[12] In larva nectochaeta postera, phototaxis a oculis definitis complexioribus mediantur.[13] Oculi definiti exprimunt saltem tria opsina: Duo opsina rhabdomerica et unum Go-opsinum.[15][16] Illa tria opsina omnia ibi phototaxim eodem modo depolarizatione mediant,[16] etsi Go-opsinum concae hyperpolarizare notum est.[17][18]

Nexus externi

Notae

  1. 1.0 1.1 Audouin, Jean Victoire; Milne-Edwards, Henri (1834). "Néréide de Dumeril. Nereis Dumerilii". Recherches pour servir a l'histoire naturelle du littoral de la France, ou, Recueil de mémoires sur l'anatomie, la physiologie, la classification et les moeurs des animaux des nos côtes : ouvrage accompagné de planches faites d'après nature 2: 196–199
  2. Read, G.. "Platynereis dumerilii (Audouin & Milne Edwards, 1834). In: Read, G.; Fauchald, K. (Ed.) (2015)"
  3. 3.0 3.1 Fauvel, Pierre (1914). "Annélides polychètes non-pélagiques provenant des campagnes de l'Hirondelle et de la Princesse-Alice (1885-1910)". Résultats des campagnes scientifiques accompliés par le Prince Albert I 46: 1–432
  4. 4.0 4.1 Fischer, Albrecht; Dorresteijn, Adriaan (March 2004). "The polychaete Platynereis dumerilii (Annelida): a laboratory animal with spiralian cleavage, lifelong segment proliferation and a mixed benthic/pelagic life cycle". BioEssays 26 (3): 314–325
  5. "Introduction - Encyclopedia of Life" (en)
  6. "Living Fossil Platynereis dumerilii: Unraveling the first steps of eye evolution". 3 December 2008
  7. "Arendt Group - Evolution of the nervous system in bilateria - EMBL" (en)
  8. Jha, A. N.; Hutchinson, T. H.; Mackay, J. M.; Elliott, B. M.; Pascoe, P. L.; Dixon, D. R. (1995). "The chromosomes Of Platynereis dumerilii (Polychaeta: Nereidae)". Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom 75 (03): 551
  9. 9.0 9.1 Fischer, Albrecht (1999). "Reproductive and developmental phenomena in annelids: a source of exemplary research problems". Hydrobiologia 402: 1–20
  10. Zeeck, Erich; Harder, Tilman; Beckmann, Manfred (1998). "Uric acid: the sperm-release pheromone of the marine polychaete Platynereis dumerilii". Journal of Chemical Ecology 24 (1): 13–22
  11. 11.0 11.1 11.2 11.3 Fischer, Antje HL; Henrich, Thorsten; Arendt, Detlev (2010). "The normal development of Platynereis dumerilii (Nereididae, Annelida)". Frontiers in Zoology 7 (1): 31
  12. 12.0 12.1 Jékely, Gáspár; Colombelli, Julien; Hausen, Harald; Guy, Keren; Stelzer, Ernst; Nédélec, François; Arendt, Detlev (20 November 2008). "Mechanism of phototaxis in marine zooplankton". Nature 456 (7220): 395–399
  13. 13.0 13.1 Randel, Nadine; Asadulina, Albina; Bezares-Calderón, Luis A; Verasztó, Csaba; Williams, Elizabeth A; Conzelmann, Markus; Shahidi, Réza; Jékely, Gáspár (27 May 2014). "Neuronal connectome of a sensory-motor circuit for visual navigation". eLife 3
  14. Arendt, D.; Tessmar-Raible, K.; Snyman, H.; Dorresteijn, A.W.; Wittbrodt, J. (29 October 2004). "Ciliary Photoreceptors with a Vertebrate-Type Opsin in an Invertebrate Brain". Science 306 (5697): 869–871
  15. Randel, N.; Bezares-Calderon, L. A.; Gühmann, M.; Shahidi, R.; Jekely, G. (10 May 2013). "Expression Dynamics and Protein Localization of Rhabdomeric Opsins in Platynereis Larvae". Integrative and Comparative Biology 53 (1): 7–16
  16. 16.0 16.1 Gühmann, Martin; Jia, Huiyong; Randel, Nadine; Verasztó, Csaba; Bezares-Calderón, Luis A.; Michiels, Nico K.; Yokoyama, Shozo; Jékely, Gáspár (August 2015). "Spectral Tuning of Phototaxis by a Go-Opsin in the Rhabdomeric Eyes of Platynereis". Current Biology 25 (17): 2265–2271
  17. Kojima, Daisuke; Terakita, Akihisa; Ishikawa, Toru; Tsukahara, Yasuo; Maeda, Akio; Shichida, Yoshinori (12 September 1997). "A Novel Go-mediated Phototransduction Cascade in Scallop Visual Cells". The Journal of Biological Chemistry 272 (37): 22979–82
  18. Gomez, MP; Nasi, E (15 July 2000). "Light transduction in invertebrate hyperpolarizing photoreceptors: possible involvement of a Go-regulated guanylate cyclase.". The Journal of neuroscience : the official journal of the Society for Neuroscience 20 (14): 5254–63
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Platynereis dumerilii ad Annelida attinet. Primum in genere Nereis posita et postea in Platynereis reposita erat. Platynereis dumerilii in maritimis aquis a zona temperata ad tropicae vivit. Potest inveniri ad Azores, in Mediterraneum, Mare Germanicum, Mare Britannicum, et Atlanticum; ac ad Promunturium Bonae Spei, in Mare Nigrum, Mare Rubrum, Sinum persicum, Mare Iaponicum, Pacifici, ad Kerguelen Insulis. Platynereis dumerilii hodie est animal grave laboratorii, acque quam vivum fossile consideratur, et in multis studiis phylogeneticae quam instar animantem usa est. Platynereis dumerilii 3 ad 18 mensis vetus fit. Mares 2 ad 3 cm longi fiunt, dum feminae 3 ad 4 cm longae fiunt.

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Platynereis dumerilii ( Dutch; Flemish )

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Platynereis dumerilii is een borstelworm uit de familie Nereididae. Het lichaam van de worm bestaat uit een kop, een cilindrisch, gesegmenteerd lichaam en een staartstukje. De kop bestaat uit een prostomium (gedeelte voor de mondopening) en een peristomium (gedeelte rond de mond) en draagt gepaarde aanhangsels (palpen, antennen en cirri).

Platynereis dumerilii werd in 1834 voor het eerst wetenschappelijk beschreven door Audouin & Milne Edwards.

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Platynereis dumerilii ( Portuguese )

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Platynereis dumerilii é uma espécie de anelídeo pertencente à família Nereididae.

A autoridade científica da espécie é Audouin & Milne Edwards, tendo sido descrita no ano de 1834.

Trata-se de uma espécie presente no território português, incluindo a sua zona económica exclusiva.

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Platynereis dumerilii: Brief Summary ( Portuguese )

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Platynereis dumerilii é uma espécie de anelídeo pertencente à família Nereididae.

A autoridade científica da espécie é Audouin & Milne Edwards, tendo sido descrita no ano de 1834.

Trata-se de uma espécie presente no território português, incluindo a sua zona económica exclusiva.

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Platynereis dumerilii ( Russian )

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Научная классификация Царство: Животные Тип: Кольчатые черви Класс: Многощетинковые черви Отряд: Aciculata Подотряд: Phyllodocida Семейство: Нереиды Род: Platynereis Вид: Platynereis dumerilii Латинское название Platynereis dumerilii
Audouin & Milne-Edwards, 1833

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Систематика
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ITIS 65950 NCBI 6359

Platynereis dumerilii (лат.) — вид многощетинковых червей из семейства нереид.

Червь живёт в умеренной и тропической зонах в прибрежных морских водах в Европе, в Средиземном море и на западном побережье Испании. Platynereis dumerilii является важным лабораторным животным, считается живым ископаемым и служит модельным организмом для многих филогенетических исследований. В лаборатории эти животные достигают в длину 3—4 см и живут в среднем 7 месяцев.

Размножение и развитие

Platynereis dumerilii раздельнополы, яйцеклетки и сперматозоиды выделяются при помощи половых феромонов. Самец обвивает тело самки, в то время как самка двигается, совершая маленькие круги. Оплодотворение происходит вне тела в воде. Гонады отсутствуют, зародышевые клетки созревают, свободно плавая в полости тела (целом).

Из оплодотворённого яйца появляется личинка-трохофора, которая через 48 часов переходит в стадию метатрохофоры. Эти личинки свободно плавают в воде при помощи своих ресничек и положительно реагируют на свет (фототаксис). Наряду с личиночными глазами (Pigmentbecherocellen), появляются также зачатки сложно устроенных глаз червя. Через четыре дня становятся заметны три сегмента животных, каждый из которых имеет пару параподий со щетинками, которые используются для передвижения. Только через три—четыре недели, когда образуется шесть сегментов тела, образуется голова с антеннами и ротовой аппарат.

Фоторецепторы

У личинок имеется два типа фоторецепторов: рабдом и ресничковые фоторецепторов. Ресничковые фоторецепторы похожи по форме на палочки и колбочки человеческого глаза, связь, которая может быть подтверждена обнаружением опсина. Отсюда следует вывод, что эволюционное происхождение этих клеток фоторецепторов очень древнее и является общим для моллюсков, членистоногих и позвоночных[1][2].

Примечания

  1. Katja Seefeldt: Wo Darwin noch erschauderte — Ursprung des menschlichen Auges (Telepolis, 31. Oktober 2004)
  2. Keren Guy: Entwicklung und molekulare Charakterisierung der Erwachsenen-und Larvalaugen in Platynereis dumerilii (Polychaeta, Annelida, Lophotrochozoa) URN: urn: nbn: de: bsz:16-opus-93070 Universitätsbibliothek Heidelberg
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Platynereis dumerilii: Brief Summary ( Russian )

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Platynereis dumerilii (лат.) — вид многощетинковых червей из семейства нереид.

Червь живёт в умеренной и тропической зонах в прибрежных морских водах в Европе, в Средиземном море и на западном побережье Испании. Platynereis dumerilii является важным лабораторным животным, считается живым ископаемым и служит модельным организмом для многих филогенетических исследований. В лаборатории эти животные достигают в длину 3—4 см и живут в среднем 7 месяцев.

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Biology

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Platynereis dumerilii inbred laboratory strains believed originally collected from inshore near Naples, Italy are used as a model organism in research on genetics, molecular biology, and evolutionary and developmental biology.

Reference

Zantke, J.; Bannister, S.; Rajan, V. B. V.; Raible, F.; Tessmar-Raible, K. (2014). Genetic and Genomic Tools for the Marine Annelid Platynereis dumerilii. Genetics. 197(1): 19-31.

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WoRMS Editorial Board
contributor
Read, Geoffrey [email]

Distribution

provided by World Register of Marine Species
Also distributed in Australia in Kalk (1958). Tropical Indo-Pacific in Kalk (1958). All other seas, perhaps maybe not Arctic seas (Fishelson and Rullier, 1969).

Reference

Day, J. H. (1967). [Errantia] A monograph on the Polychaeta of Southern Africa. Part 1. Errantia. British Museum (Natural History), London. pp. vi, 1–458, xxix.

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contributor
Edward Vanden Berghe [email]