Choreutidae

Choreutidae, és una família de lepidòpters ditrisis.

Les arnes es poden trobar a tot el món, amb 19 gèneres en tres subfamílies definits per les característiques estructurals dels estadis immadurs (larves i pupes), en lloc dels caràcters dels adults (Heppner i Duckworth, 1981; Rota, 2005).

Comportament

Aquestes arnes petites solen tenir tons metàl·lics^[1] i la majoria de vol diürn (alguns també nocturn). Alguns exemplars tropicals com el gènere Saptha són bastant espectaculars, amb brillants bandes verdes metàl·liques.^[2] Els membres del gènere Brenthia, sovint es troben en la seva pròpia subfamília Brenthiinae, tenen punts rodons en les ales i s'ha demostrat que imiten a les aranyes saltadores (Rota i Wagner, 2006).

Subfamílies i gèneres

Millieriinae

• Millieria Ragonot, 1874
• Phormoestes Heppner, 1982
• Nyx Heppner, 1982

Brenthiinae

• Brenthia Clemens, 1860
  • =Microaethia Chambers, 1878
• Litobrenthia Diakonoff 1978

Choreutinae

• Alasea Rota, 2008
• Anthophila Haworth [1811]
• Asterivora Dugdale, 1979
• Caloreas Heppner, 1977
• Choreutis Hübner [1825]
  • =Choreutidia Sauber, 1902
  • =Hemerophila Fernald, 1900
  • =Allononyma Busck, 1904
  • =Macropia Costa, 1836
• Hemerophila Hübner [1817]
• ?Melanoxena Dognin, 1910
• Peotyle Diakonoff, 1978
• Prochoreutis Heppner, 1981
• Rhobonda Walker, 1863
• Saptha Walker, 1864
  • =Badera Walker, 1866
  • =Chordates Snellen, 1877
• Tebenna Billberg, 1820
  • =Porpe Hübner, 1825
• Trichocirca Meyrick, 1920
• Telosphrantis Meyrick, 1932
• Tortyra Walker, 1863
  • =Choregia Zeller, 1877
  • =Walsinghamia Riley, 1889
• Zodia Heppner, 1879

Referències

• Dugdale, J.S., Kristensen, N.P., Robinson, G.S. and Scoble, M.J. (1999) [1998]. The smaller microlepidoptera grade superfamilies, Ch.13., pàg. 217–232 in Kristensen, N.P. (Ed.). Lepidoptera, Moths and Butterflies. Volume 1: Evolution, Systematics, and Biogeography. Handbuch der Zoologie. Eine Naturgeschichte der Stämme donis Tierreiches / Handbook of Zoology. A Natural History of the phyla of the Animal Kingdom. Band / Volume IV Arthropoda: Insecta Teilband / Part 35: 491 pàg. Walter de Gruyter, Berlin, New York.
• Heppner, J. B. and W. D. Duckworth (1981). Classification of the superfamily Sesioidea (Lepidoptera: Ditrysia). Smithsonian Contributions to Zoology 314: 1-144.
• Minet, J. (1986). Ébauche d'uneix classification moderne de l'ordre donis Lépidoptères. Alexanor 14(7): 291-313.
• Rota, J. (2005) Larval and Pupal Descriptions of the Neotropical Choreutid Genera Rhobonda Walker and Zodia Heppner (Lepidoptera: Choreutidae) Annals of the Entomological Society of America, 98: 37-47. Abstract
• Rota, J. and Wagner, D.L. (2006). Predator Mimicry: Metalmark Moths Mimic Their Jumping Spider Predators. PLoS ONE, 1(1): i45. Published online 20 December 2006. doi:10.1371/journal.pone.0000045 10.1371/journal.posa.0000045. Abstract/pdf

Bibliografia

• Firefly Encyclopedia of Insects and Spiders, edited by Christopher O'Toole, ISBN 1-55297-612-2, 2002

Enllaços externs

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Die Spreizflügelfalter (Choreutidae) sind eine Familie der Schmetterlinge (Lepidoptera). Sie kommen weltweit mit ca. 400 Arten vor. In ganz Europa sind bis jetzt 17 Arten beschrieben^[1], von denen in Mitteleuropa 12 Arten vorkommen.^[2] Sie wurden früher zu den Rundstirnmotten (Glyphipterigidae) gezählt. Auch wurden sie in die Überfamilie Sesioidea eingeordnet, haben aber mittlerweile eine eigene, nur ihre Familie enthaltende Überfamilie, deren Verwandtschaftsverhältnis zu den anderen aber noch unklar ist.

Merkmale

Die Falter erreichen eine Flügelspannweite von 5 bis 20 Millimetern. Die Vorderflügel sind eher breit und weisen oft metallische Muster auf. Die Hinterflügel sind ähnlich breit, wie die Vorderflügel und sind abgerundet. Sie sind kurz gefranst. Die fadenförmigen Fühler sind mittellang und erreichen 0,5 bis 0,75 mal die Länge der Vorderflügel. Neben den Facettenaugen haben die Falter auch Punktaugen (Ocelli). Ihre Maxillarpalpen sind gut entwickelt, oder zurückgebildet, ihr an der Basis geschuppter Saugrüssel ist voll entwickelt.

Die Vorderflügel haben 12 Flügeladern mit zwei Analadern (1b und 1c), die Hinterflügel, die eine gut ausgebildete Aderung aufweisen haben 10 Adern mit drei Analadern (1a, 1b und 1c).

Lebensweise

Die oligophagen Raupen skelettieren Blätter, nur wenige sind Minierer. Sie fressen Pflanzen zahlreicher Familien, wie z. B. Rosengewächse (Rosaceae), Brennnesselgewächse (Urticaceae), Maulbeergewächse (Moraceae), Lippenblütler (Lamiaceae), Korbblütler (Asteraceae) und Osterluzeigewächse (Aristolochiaceae).^[3]

Manche Arten sind Schädlinge, wie z. B. Choreutis pariana an Apfel.^[3]

Systematik

Innerhalb der Familie der Spreizflügelfalter (Choreutidae) werden drei Unterfamilien unterschieden:^[4]

• Brentiinae: Mit etwa 70 Arten, verbreitet in der Nearktis, Südasien und Australasien.
  • Brenthia
    • Brenthia elachista Walsingham, 1900
• Choreutinae: Mit etwa 290 Arten, verbreitet in der Holarktis sowie pantropisch; in der indonesisch-australischen Region liegt die höchste Artenvielfalt vor.
• Millierinae: Mit nur 3 Arten, die in Europa, Florida und Chile heimisch sind.

Hier eine Aufzählung der in Europa verbreiteten Arten:

Unterfamilie Millierinae

• Millieria dolosalis (Heydenreich, 1851) A, CH, D

Unterfamilie Choreutinae

• Anthophila abhasica Danilevsky, 1969 A, D
• Anthophila fabriciana (Linnaeus, 1767) A, CH, D
• Anthophila threnodes (Walsingham, 1910)
• Choreutis diana (Hübner, 1822) CH, D
• Choreutis nemorana (Hübner, 1799) A, CH, D
• Choreutis pariana (Clerck, 1759) A, CH, D
• Prochoreutis holotoxa (Meyrick, 1903) A, CH
• Prochoreutis myllerana (Fabricius, 1794) A, CH, D
• Prochoreutis sehestediana (Fabricius, 1776) CH, D
• Prochoreutis solaris (Erschoff, 1877)
• Prochoreutis stellaris (Zeller, 1847) A
• Prochoreutis ultimana (Krulikovsky, 1909)
• Tebenna bjerkandrella (Thunberg, 1784) A, CH, D
• Tebenna chingana Danilevsky, 1969
• Tebenna micalis (Mann, 1857) CH, D
• Tebenna pretiosana (Duponchel, 1842)

Quellen

Einzelnachweise

1. ↑ Choreutidae bei Fauna Europaea. Abgerufen am 25. Februar 2011
2. ↑ Choreutidae. Lepiforum e.V., abgerufen am 15. Januar 2007.
3. ↑ ^{a b} Taxonomic Group: Lepidoptera, Choreutidae. Fauna Europaea, abgerufen am 15. Januar 2007.
4. ↑ Malcolm J. Scoble: The Lepidoptera - Form, Function and Diversity. Oxford University Press, 1995, ISBN 0-19-854952-0, S. 262–264 (englisch).

Literatur

• Thomas Kaltenbach, Peter Victor Küppers: Kleinschmetterlinge. Verlag J. Neudamm-Neudamm, Melsungen 1987, ISBN 3-7888-0510-2.

Weblinks

• British Insects: the Families of Lepidoptera

Choreutidae, or metalmark moths, are a family of insects in the lepidopteran order whose relationships have been long disputed. It was placed previously in the superfamily Yponomeutoidea in family Glyphipterigidae and in superfamily Sesioidea. It is now considered to represent its own superfamily (Minet, 1986). The relationship of the family to the other lineages in the group "Apoditrysia" need a new assessment, especially with new molecular data.

Distribution

The moths occur worldwide, with 19 genera in three subfamilies defined by the structural characteristics of the immature stages (larvae and pupae), rather than the characters of the adults (Heppner and Duckworth, 1981; Rota, 2005).

Behaviour

These small moths often bear metallic scales^[1] and are mostly day-flying (some also come to lights), with a jerky, pivoting behaviour, and may fluff up their wings at an extreme angle. Some tropical exemplars such as the genus Saptha are quite spectacular, with bright green metallic bands.^[2] The members of the genus Brenthia, usually placed in their own subfamily Brenthiinae, have eyespots on the wings and have been shown to mimic jumping spiders (Rota and Wagner, 2006).

Larval hostplants

Most species skeletonize leaves often among silken webbing.^[3] The foodplants of many Choreutinae occurring in the temperate region and some tropical species are known ^[4] being dominated by Asteraceae, Betulaceae, Boraginaceae, Dipterocarpaceae, Fabaceae, Labiatae, Moraceae (mainly Ficus), Rosaceae, Sapindaceae and Urticaceae. The European nettle-tap moth (Anthophila fabriciana Linnaeus, 1767), ^{[nb 1]}is a familiar sight pirouetting around "stinging nettles" Urtica and nearby flowers while Choreutis pariana ^[5] skeletonizes apple leaves. The last genus has 85 species worldwide one of which, C. tigroides, is a pest of "jackfruit" (Artocarpus) (Dugdale et al., 1999).

Notes

References

Choreutidae, es una familia de lepidópteros ditrisios.

Descripción

Las polillas se encuentran en todo el mundo, con 19 géneros en tres subfamilias definidos por las características estructurales de los estadios inmaduros (larvas y pupas), en lugar de los caracteres de los adultos (Heppner y Duckworth, 1981; Rota, 2005).

Comportamiento

Estas polillas pequeñas suelen tener tonos metálicos[1] y la mayoría de vuelo diurno (algunos también nocturno). Algunos ejemplares tropicales como el género Saptha son bastante espectaculares, con brillantes bandas verdes metálicas[2]. Los miembros del género Brenthia, a menudo se encuentra en su propia subfamilia Brenthiinae, tienen puntos redondos en las alas y se ha demostrado que imitan a las arañas saltadoras (Rota y Wagner, 2006).

Subfamilias y géneros

Millieriinae

• Millieria Ragonot, 1874
• Phormoestes Heppner, 1982
• Nyx Heppner, 1982

Brenthiinae

• Brenthia Clemens, 1860
  • =Microaethia Chambers, 1878
• Litobrenthia Diakonoff 1978

Choreutinae

• Alasea Rota, 2008
• Anthophila Haworth [1811]
• Asterivora Dugdale, 1979
• Caloreas Heppner, 1977
• Choreutis Hübner [1825]
  • =Choreutidia Sauber, 1902
  • =Hemerophila Fernald, 1900
  • =Allononyma Busck, 1904
  • =Macropia Costa, 1836
• Hemerophila Hübner [1817]
• ?Melanoxena Dognin, 1910
• Peotyle Diakonoff, 1978
• Prochoreutis Heppner, 1981
• Rhobonda Walker, 1863
• Saptha Walker, 1864
  • =Badera Walker, 1866
  • =Chordates Snellen, 1877
• Tebenna Billberg, 1820
  • =Porpe Hübner, 1825
• Trichocirca Meyrick, 1920
• Telosphrantis Meyrick, 1932
• Tortyra Walker, 1863
  • =Choregia Zeller, 1877
  • =Walsinghamia Riley, 1889
• Zodia Heppner, 1879

Referencias

• Dugdale, J.S., Kristensen, N.P., Robinson, G.S. and Scoble, M.J. (1999) [1998]. The smaller microlepidoptera grade superfamilies, Ch.13., pp. 217–232 in Kristensen, N.P. (Ed.). Lepidoptera, Moths and Butterflies. Volume 1: Evolution, Systematics, and Biogeography. Handbuch der Zoologie. Eine Naturgeschichte der Stämme des Tierreiches / Handbook of Zoology. A Natural History of the phyla of the Animal Kingdom. Band / Volume IV Arthropoda: Insecta Teilband / Part 35: 491 pp. Walter de Gruyter, Berlin, New York.
• Heppner, J. B. and W. D. Duckworth (1981). Classification of the superfamily Sesioidea (Lepidoptera: Ditrysia). Smithsonian Contributions to Zoology 314: 1-144.
• Minet, J. (1986). Ébauche d'une classification moderne de l'ordre des Lépidoptères. Alexanor 14(7): 291-313.
• Rota, J. (2005) Larval and Pupal Descriptions of the Neotropical Choreutid Genera Rhobonda Walker and Zodia Heppner (Lepidoptera: Choreutidae) Annals of the Entomological Society of America, 98: 37-47. Abstract
• Rota, J. and Wagner, D.L. (2006). Predator Mimicry: Metalmark Moths Mimic Their Jumping Spider Predators. PLoS ONE, 1(1): e45. Published online 20 December 2006. doi 10.1371/journal.pone.0000045. Abstract/pdf

Fuentes

• Firefly Encyclopedia of Insects and Spiders, edited by Christopher O'Toole, ISBN 1-55297-612-2, 2002

Tuikekoit (Choreutidae) on pieni perhosheimo. Ryhmän sukulaisuus muiden perhosten suhteen on epäselvä.

Tuikekoit ovat pääasiassa päiväaktiivisia, pieniä perhosia, joiden siipiväli on vain 10–15 mm. Aikuisten yksilöiden siivissä on usein metallinhohtoisia täpliä tai raitoja ja perhonen voi nostaa siipensä jyrkkään kulmaan ruumiinsa yläpuolelle. Etusiiven kärki on usein kulmikas.^[1][2][3] Muutamat lajit jäljittelevät sekä liikkumistapansa että ulkonäkönsä puolesta hyppyhämähäkkejä.^[4]

Toukat elävät ravintokasvin lehtien väleihin seitistä kutomissaan tunneleissa tai ovat lehtimiinaajia.

Lajit Suomessa

Suomessa on tavattu yhdeksän tuikekoilajia.^[5]

• Hirvenjuurituikekoi Tebenna pretiosana
• Luhtatuikekoi Prochoreutis solaris
• Nokkostuikekoi Anthophila fabriciana
• Ohdaketuikekoi Tebenna bjerkandrella
• Punetuikekoi Prochoreutis sehestediana
• Ruskotuikekoi Prochoreutis ultimana
• Sinetuikekoi Choreutis diana
• Sysituikekoi Prochoreutis myllerana
• Tarhatuikekoi Choreutis pariana

Lähteet

Les Choreutidae sont une famille de lépidoptères, la seule famille de la super-famille des Choreutoidea^[1]. Elle comporte 18 genres et environ 406 espèces^[1].

Liste des sous-familles

Selon ITIS (29 avr. 2010)^[2] et NCBI (29 avr. 2010)^[3] :

• Choreutinae
• Millierinae

Notes et références

I Coreutidi (Choreutidae Stainton, 1858)^[1] sono una famiglia di lepidotteri diffusa in tutti i continenti con oltre 400 specie, e rappresentano gli unici membri della superfamiglia Choreutoidea Stainton, 1858.^[2][3][4][5]

Etimologia

Il nome del genere tipo di questa famiglia, Choreutis Hübner, 1825,^[6] deriva dal termine greco χορευτής (choreutḗs = danzatore), con riferimento all'incedere "ballerino" degli adulti di alcune specie.^[7][8]

Descrizione

I membri di questa famiglia sono piccole falene eteroneure, appartenenti ai Ditrysia, con abitudini diurne e un'apertura alare compresa tra 5 e 20 mm.^[4][5][9]

Secondo Heppner (1982)^[10] e Minet (1991),^[11] le probabili caratteristiche autapomorfiche sarebbero fondamentalmente tre: 1) spirotromba provvista di scaglie (parallelismo con i Gelechioidea tra gli Apoditrysia e con i Pyraloidea tra gli Obtectomera); 2) palpi mascellari ridotti, costituiti da uno o due articoli; 3) Uova del tipo verticale.^[4][5][9]

Al contrario, gli uncini disposti a cerchio o a ellisse nelle pseudozampe delle larve, anziché in strisce trasversali, oltre alla presenza di uno pterostigma sull'ala anteriore, sarebbero da considerarsi plesiomorfie.^[4]

Adulto

Capo

Le scaglie della regione frontale sono più addossate alla superficie del capo, mentre quelle del vertice appaiono più distanziate.^[4][5][12]

Gli ocelli sono presenti e ben sviluppati, ma mancano i chaetosemata.^{[4][5][9][12]}

Le antenne sono filiformi in entrambi i sessi, ma nei maschi di regola presentano una fila di lunghe setole sulla superficie ventrale, e in alcuni casi gli antennomeri del flagello sono inspessiti dalla presenza di scaglie.^{[4][5][9][12]}

Nell'apparato boccale, la spirotromba è presente e munita di scaglie alla base. I palpi mascellari sono molto ridotti, con uno o due articoli. I palpi labiali sono invece più sviluppati e ricurvi verso l'alto, spesso con ciuffi di scaglie ventrali sul secondo segmento;^[4][5][9] distalmente si nota la presenza di un organo di vom Rath a forma di coppa.^[4][12]

Torace

Nelle zampe, l'epifisi è presente e la formula degli speroni tibiali è 0-2-4; la metatibia è liscia, ma si osservano ciuffi di scaglie in prossimità della base degli speroni.^{[4][5][9][12]}

Nell'ala anteriore, lo pterostigma è presente, così come la spinarea. L'ala appare ampia e grosso modo triangolare, con apice ad angolo acuto ma arrotondato, e spesso con macchie di colorazione "metallica", ossia iridescenze dovute all'angolo di incidenza della luce rispetto alla superficie delle scaglie. L'accoppiamento alare è di tipo frenato: nel maschio il frenulum è costituito da una robusta setola, agganciata ad un piccolo retinaculum membranoso sulla subcosta, al di sotto dell'ala anteriore, mentre nella femmina il frenulum è costituito da tre setole più sottili, laddove il retinaculum si compone di una serie di setole ricurve, poste in prossimità della base della costa, sempre sulla pagina inferiore dell'ala anteriore. Le nervature sono tutte separate; Sc ha un andamento sinusoidale, mentre R appare più diritta; si osservano quattro distinti rami di Rs, ciascuno che parte separatamente dalla cellula discale; anche i tre rami di M partono separatamente dalla cellula discale, ma M₃ e CuA₁ si originano entrambe dal'angolo posteriore della cellula. CuA₁ e CuA₂ sono ben delineate, mentre CuP è ridotta ad una struttura residuale in prossimità del margine. 1A+2A presenta una lunga e robusta biforcazione basale.^{[4][5][9][12]}

Nell'ala posteriore, più tozza e squadrata, M₃ e CuA₁ possono essere unite parzialmente, oppure correre separate per tutta la propria lunghezza. Anche qui CuP è vestigiale e presente solo in prossimità del margine. 1A+2A mostra una biforcazione basale, mentre 3A è sempre presente.^{[4][5][9][12]}

Addome

L'apparato riproduttore è alquanto variabile in entrambi i sessi.^[4]

Nel genitale maschile l'uncus e lo gnathos sono presenti in pochi casi, tuttavia il tegumen rivela degli inspessimenti provvisti di setole in prossimità della parte apicale. Spesso il saccus può essere sviluppato, mentre le valve possono essere semplici, lobate, oppure di forma più articolata. L'edeago talvolta è munito di un ampio coecum penis, e si può notare un solo cornutus. Non sono presenti coremata.^[5][9][12]

Nella femmina, i segmenti A8 e A10 non sono estensibili. Il genitale rivela apofisi alquanto ridotte in lunghezza. Il ductus bursae può essere sclerotizzato oppure membranoso, e in quest'ultimo caso può assumere una forma a spirale, oppure essere notevolmente allungato e sottile. Il corpus bursae è membranoso e arrotondato, spesso provvisto di un signum che può avere anche notevoli proporzioni.^[5][9][12]

Uovo

In Anthophila, l'uovo è del tipo verticale, con una zona concava circolare all'estremità superiore, al centro della quale è posizionato il micropilo.^[13] In Choreutis, al contrario, appare appiattito, con una serie radiale di inspessimenti verticali.^[9]

Larva

A maturazione completa, le larve non superano di solito i 20 mm, con un colore del corpo che può variare dal verde pallido al bianco-giallastro, oppure al brunastro; la capsula cefalica tende di regola al giallo o al color ambra, spesso con zone di colore più scuro. Sono presenti esclusivamente setole primarie, particolarmente lunghe in Brenthia.^[14]

Capo

Il capo è ipognato e raggiunge notevoli dimensioni in Brenthia.^[5][9][14] Il frontoclipeo si estende fino a metà o anche ai tre quarti della sutura epicraniale.^[9][14] Sono presenti sei stemmata, disposti più o meno a semicerchio, col sesto e ultimo talmente ridotto da essere difficilmente osservabile.^[9][14] Le setole anteriori A1, A2 ed A3 sono disposte a formare un triangolo fortemente ottuso, in una posizione più caudale rispetto a quanto si osserva di solito nei Lepidoptera, con A2 vicinissima al secondo stemma.^[14]

Torace

Lo scudo protoracico è alquanto sviluppato, ben sclerificato e di un colore che va dal giallo-brunastro fin quasi al nero.^[9][14] Sempre nel protorace, le setole prespiracolari laterali (gruppo L) sono tre e i pinacula sono nettamente contornati, con tonalità comprese tra il giallo-brunastro e il bruno-nerastro.^[9][14] Sul meso- e metatorace, L1 ed L2 sono ravvicinate.^[9][14]

Addome

Nell'addome, tutti i segmenti sono sviluppati, con pinacula ben delineati. Nei primi otto segmenti, la setola laterale L2 è disposta anteroventralmente rispetto a L1, ma molto vicina a quest'ultima.^[9][14] In A2 il gruppo di setole subventrali SV è disposto a triangolo.^[14]

Le pseudozampe sono molto lunghe e sottili; sono presenti sui segmenti III-VI e X, con uncini disposti a cerchio su un singolo ordine, oppure lateralmente a ellisse incompleta, come in Hemerophila.^{[5][9][12][14]}

Pupa

Il capo della pupa è arrotondato. I palpi mascellari sono sviluppati, mentre quelli labiali sono esposti, così come i profemori. Le appendici sono appena unite tra loro e col resto del corpo. Le antenne e la spirotromba non raggiungono la punta delle ali, che a loro volta si spingono fino ai segmenti A4 o A5. Ciascuno dei segmenti da A2 ad A7 possiede una fila di spinule sulla superficie dorsale, rivolte caudalmente; in alcuni generi, anche il segmento A8 può presentare le vestigia di tale struttura. I segmenti da A3 ad A7 nel maschio, e da A3 ad A6 nella femmina, sono mobili. Le setole sono corte e inconsistenti, ma più allungate in Brenthia, e dotate di doppia punta. Non esiste un vero e proprio cremaster, ma, in alcuni casi, sui segmenti A9-A10 si possono osservare alcune setole uncinate, oppure una coppia di speroni sulla superficie dorsale.^{[4][5][9][12]}

Biologia

Gli adulti volano durante il giorno in pieno sole e possono anche essere notati in prossimità delle piante nutrici, sulle cui foglie rimangono con le ali sollevate e leggermente "accartocciate"; sono soliti procedere avanti e indietro con un'andatura a rapidi scatti, e possono anche saltare da una foglia all'altra in una sorta di danza (da cui il nome della famiglia; cfr. sezione Etimologia); qualora siano disturbati, volano via prontamente.^[9][14]

Ciclo biologico

Le uova sono deposte di solito singolarmente sulla pianta nutrice.^[5][9]

Le larve non sono minatrici fogliari, ma al contrario si alimentano all'esterno delle foglie, spesso protette da una esile trama di seta, oppure in un riparo costituito da due foglie unite da fili sericei o da una tasca formata da una foglia parzialmente ripiegata su sé stessa. Va tuttavia segnalato che una specie si alimenta all'interno del seme della pianta ospite, mentre altre due scavano una galleria all'interno del fusto, pur mancando delle caratteristiche anatomiche tipiche delle minatrici fogliari.^[9][14]

L'impupamento avviene all'interno di un bozzolo sericeo a due o tre strati, talvolta dalla struttura complessa, attaccato alla foglia della pianta ospite; la pupa si spinge attivamente fuori dal proprio riparo prima dell'emersione dell'adulto.^[5][9]

Comportamento

Un carattere distintivo della famiglia è rappresentato dall'insolito modo di procedere degli adulti, che, almeno in taluni gruppi, sembrano "danzare" con un andamento ritmico e intervallato da piccoli balzi. Da questa peculiarità ha avuto origine il nome scientifico del taxon (vedi sez. "Etimologia"). L'insolito modo di spostarsi è spesso accompagnato dalla posizione sollevata delle ali che, anche grazie alle peculiari macchie di colore presenti sulla pagina superiore, nell'insieme permetterebbero l'imitazione di alcune specie di ragni, fornendo a queste falene un indubbio vantaggio nella difesa contro i predatori. È il caso ad esempio delle Brenthiinae Brenthia hexaselena e Brenthia monolychna, le quali imitano sia nella colorazione, sia nella postura e nei movimenti, i ragni salticidi che sono tra i propri predatori; grazie a prove condotte in laboratorio, si è potuto constatare che l'imitazione è talmente efficace da riuscire a indurre, ad opera del predatore, un comportamento di tipo territoriale, analogo a quello tenuto nei confronti di un altro ragno salticide. Il suddetto fenomeno testimonia l'elevata pressione selettiva svolta da questi aracnidi sui lepidotteri diurni, e rappresenta un interessante fenomeno evolutivo.^[15]

Alimentazione

Alcune piante nutrici

Le larve dei coreutidi si accrescono soprattutto su membri delle Asteraceae, delle Moraceae (in particolare Ficus), delle Fabaceae e delle Rosaceae, ma in realtà la gamma delle piante ospiti è abbastanza ampia e articolata, anche tenendo conto del fatto che in alcuni casi una specie può essere alquanto polifaga, e attaccare diversi membri di un unico genere vegetale, o anche di generi differenti. La lista riportata qui sotto non ha pertanto pretese di completezza. Tra le possibili piante nutrici ricordiamo, a titolo di esempio:^{[4][5][9][14][16]}

• Apiaceae Lindl., 1836
  • Eryngium L., 1753 (calcatreppole)
• Asteraceae Martinov, 1820
  • Acourtia D. Don, 1830
  • Anaphalis DC., 1837 [1838]
    • Anaphalis margaritacea (L.) Benth. & Hook.f., 1873
  • Arctium L., 1753
    • Arctium lappa L., 1753 (bardana maggiore)
  • Arctotheca J.C. Wendl., 1798
    • Arctotheca calendula (L.) Levyns, 1942
  • Arnica L., 1753
  • Artemisia L., 1753
    • Artemisia vulgaris L., 1753 (artemisia comune)
  • Aster L., 1753 (astri)
  • Balsamorhiza Hook. ex Nutt., 1840
    • Balsamorhiza sagittata (Pursh) Nutt., 1840
  • Blumea DC., 1833
    • Blumea balsamifera (L.) DC., 1836
  • Brachyglottis J.R. Forst. & G. Forst., 1775
    • Brachyglottis bellidioides (Hook.f.) B.Nord., 1978
  • Calendula L., 1753
    • Calendula officinalis L., 1753 (calendula)
  • Carduus L., 1753 (cardi)
  • Carlina L., 1753
  • Cirsium Mill., 1754
    • Cirsium horridulum Michx., 1803
    • Cirsium vulgare (Savi) Ten., 1835 (cardo asinino)
  • Cynara L., 1753
    • Cynara scolymus L., 1753 (carciofo)
  • Eleutheranthera Poit., 1811 [1802]
    • Eleutheranthera ruderalis (Sw.) Sch.Bip., 1866
  • Erechtites Raf., 1817
  • Erigeron L., 1753
    • Erigeron bonariensis L., 1753 (saeppola di Buenos Aires)
  • Helichrysum Mill., 1754
    • Helichrysum bracteatum (Venten.) Willd., 1803
  • Inula L., 1753 (enule)
    • Inula orientalis Lam., 1789
  • Onopordum L., 1753
    • Onopordum acanthium L., 1753 (acanzio)
  • Petasites Mill., 1754
    • Petasites frigidus (L.) Fr., 1845
  • Pseudognaphalium Kirp., 1950
    • Pseudognaphalium obtusifolium (L.) Hilliard & B.L.Burtt, 1981
  • Pulicaria Gaertn., 1791
    • Pulicaria dysenterica (L.) Gaertn., 1791 (incensaria comune)
  • Senecio L., 1753
    • Senecio triangularis Hook., 1834
  • Silphium L., 1753
    • Silphium integrifolium Michx., 1803
  • Sphaeranthus L., 1753
    • Sphaeranthus indicus L., 1753
• Betulaceae Gray, 1821
  • Alnus Mill., 1754 (ontani)
    • Alnus rubra Bong., 1833
  • Betula L., 1753 (betulle)
    • Betula papyrifera Marshall, 1785
• Boraginaceae Juss., 1789
  • Cordia L., 1753
    • Cordia curassavica (Jacq.) Roem. & Schult., 1819
    • Cordia dichotoma G.Forst., 1786
    • Cordia myxa L., 1753
  • Cynoglossum L., 1753
    • Cynoglossum grande Douglas ex Lehm., 1830
  • Hydrophyllum L., 1753
    • Hydrophyllum tenuipes A.Heller, 1898
  • Mertensia Roth, 1797
    • Mertensia paniculata (Aiton) G. Don, 1837
• Convolvulaceae Juss., 1789
  • Ipomoea L., 1753
• Dipterocarpaceae Blume, 1825
  • Shorea Roxb. ex C.F. Gaertn., 1805
    • Shorea robusta Gaertn., 1805
• Euphorbiaceae Juss., 1789
  • Alchornea Sw., 1788
    • Alchornea cordifolia (Schumach. & Thonn.) Müll.Arg., 1865
• Fabaceae Lindl., 1836
  • Amphicarpaea Elliott ex Nutt., 1818
    • Amphicarpaea bracteata (L.) Fernald, 1933
  • Centrosema (DC.) Benth., 1837
  • Cullen Medik., 1787
    • Cullen corylifolium (L.) Medik., 1787
  • Desmodium Desv., 1813
  • Erythrina L., 1753
  • Glycine Willd., 1802
    • Glycine max (L.) Merr., 1917 (soia)
  • Inga Mill., 1754
    • Inga vera Willd., 1806
  • Lupinus L., 1753
    • Lupinus latifolius J.Agardh, 1835
  • Vigna Savi, 1824
    • Vigna unguiculata (L.) Walp., 1843 (fagiolo dall'occhio)
• Fagaceae Dumort., 1829
  • Quercus L., 1753 (querce)
    • Quercus acuta Thunb., 1784
    • Quercus gilva Blume, 1851
    • Quercus myrsinifolia Blume, 1851
• Lamiaceae Martinov, 1820
  • Mentha L., 1753
  • Scutellaria L., 1753
    • Scutellaria galericulata L., 1753 (scutellaria palustre)
    • Scutellaria lateriflora L., 1753
    • Scutellaria minor Huds., 1762
• Malvaceae Juss., 1789
  • Grewia L., 1753
• Moraceae Gaudich., 1835
  • Artocarpus J.R.Forst. e G.Forst, 1775 (alberi del pane)
    • Artocarpus integer (Thunb.) Merr., 1917
  • Ficus L., 1753
    • Ficus aurea Nutt., 1846 (fico strangolatore della Florida)
    • Ficus barclayana (Miq.) Miq., 1867
    • Ficus benghalensis L., 1753 (baniano)
    • Ficus benjamina L., 1767
    • Ficus carica L., 1753 (fico comune)
    • Ficus citrifolia Mill., 1768
    • Ficus microcarpa L.f., 1782
    • Ficus pumila L., 1753 (fico rampicante)
    • Ficus racemosa L., 1753
    • Ficus saussureana DC., 1841
    • Ficus sycomorus L., 1753 (sicomoro)
    • Ficus tinctoria G.Forst., 1786
    • Ficus trichopoda Baker, 1883
    • Ficus variegata Blume, 1825
  • Streblus Lour., 1790
    • Streblus asper Lour., 1790
• Rosaceae Juss., 1789
  • Cotoneaster Medik., 1789 (cotonastri)
  • Crataegus L., 1753
  • Malus Mill., 1754
    • Malus domestica Borkh., 1803 (melo comune)
    • Malus pumila Mill., 1768
    • Malus sylvestris (L.) Mill., 1768 (melo selvatico)
  • Prunus L., 1753
    • Prunus persica (L.) Batsch, 1801 (pesco)
  • Pyracantha M. Roem., 1847
  • Pyrus L., 1753 (peri)
  • Rosa L., 1753 (rose)
• Salicaceae Mirb., 1815
  • Populus L., 1753 (pioppi)
    • Populus balsamifera L., 1753 (pioppo balsamico)
  • Salix L., 1753
• Sapindaceae Juss., 1789
  • Allophylus L., 1753
    • Allophylus africanus P.Beauv., 1818
  • Sapindus L., 1753
    • Sapindus saponaria L., 1753
• Urticaceae Juss., 1789
  • Parietaria L., 1753
  • Urtica L., 1753
    • Urtica dioica L., 1753 (ortica)

Parassitoidismo

Sono noti fenomeni di parassitoidismo ai danni dei coreutidi, attuato da parecchie specie di imenotteri appartenenti alle superfamiglie Chalcidoidea e Ichneumonoidea; tra queste citiamo:^[17][18]

Alcuni parassitoidi

• Chalcidoidea Latreille, 1817
  • Chalcididae Latreille, 1817
    • Conura side Walker, 1843
  • Eulophidae Westwood, 1829
    • Elachertus walkeri (Ratzeburg, 1848)
    • Elasmus nudus Nees, 1834
    • Eulophus anomocerus (Crawford, 1912)
    • Horismenus Walker, 1843
    • Notanisomorphella borborica (Giard, 1903)
    • Pediobius facialis (Giraud, 1863)
    • Stenomesius rufescens (Retzius, 1783)
    • Sympiesis bimaculatipennis (Girault, 1912)
    • Sympiesis fragariae Miller, 1970
    • Sympiesis tebennae Myartseva & Kurashev, 1991
    • Tetrastichus Haliday, 1844
  • Eurytomidae Walker, 1832
    • Eurytoma rosae Nees, 1834
  • Pteromalidae Dalman, 1820
    • Dibrachys microgastri (Bouche, 1834)
    • Mesopolobus finlaysoni Doganlar, 1979
    • Mesopolobus longicaudae Doganlar, 1979
    • Pteromalus Swederus, 1795
• Ichneumonoidea Latreille, 1802
  • Braconidae Nees, 1811
    • Aleiodes scrutator (Say, 1836)
    • Apanteles (Choeras) dorsalis (Spinola, 1808)
    • Apanteles impurus (Nees, 1834)
    • Apanteles longicauda (Wesmael, 1837)
    • Apanteles nigrofemoratus Granger, 1949
    • Apanteles obscurus (Nees, 1834)
    • Apanteles (Choeras) semele (Nixon, 1965)
    • Apanteles sicarius Marshall, 1885
    • Apanteles xanthostigma (Haliday, 1834)
    • Chelonus (Microchelonus) contractus (Nees, 1816)
    • Clinocentrus cunctator (Haliday, 1836)
    • Diolcogaster curticornis (Granger, 1949)
    • Habrobracon gelechiae (Ashmead, 1889)
    • Hypomicrogaster ecdytolophae (Muesebeck, 1922)
    • Meteorus ictericus (Nees, 1811)
    • Microgaster messoria Haliday, 1834
    • Microgaster nixalebion Shaw, 2004
    • Oncophanes betulae Muesebeck, 1935
    • Oncophanes minutus (Wesmael, 1838)
    • Pholetesor circumscriptus (Nees, 1834)
    • Protapanteles aletta (Nixon, 1973)
    • Protapanteles fulvipes Halyday, 1834)
    • Protapanteles immunis (Haliday, 1834)
    • Protapanteles mygdonia (Nixon, 1973)
    • Rhygoplitis choreuti (Viereck, 1912)
    • Rhysipolis decorator (Haliday, 1836)
    • Triaspis luteipes (Thomson, 1874)
  • Ichneumonidae Latreille, 1802
    • Aethecerus parianae Uchida, 1924
    • Aethecerus placidus Wesmael, 1845
    • Aethecerus rugifrons Holmgren, 1890
    • Apechthis quadridentata (Thomson, 1877)
    • Apophua bipunctoria (Thunberg, 1822)
    • Bathythrix thomsoni (Kerrich, 1942)
    • Campoletis julia (Viereck, 1925)
    • Campoplex lyratus (Thomson, 1887)
    • Campoplex pyraustae Smith, 1931
    • Campoplex tumidulus Gravenhorst, 1829
    • Diadegma armillatum (Gravenhorst, 1829)
    • Diadegma chrysostictos (Gmelin, 1790)
    • Diadegma claripenne (Thomson, 1887)
    • Diadegma exareolator Aubert, 1964
    • Diadegma fenestrale (Holmgren, 1860)
    • Diadegma monospilum (Thomson, 1887)
    • Diadegma rufatum (Bridgman, 1884)
    • Diadegma trochanteratum (Thomson, 1887)
    • Diadromus japonicus (Ashmead, 1906)
    • Encrateola laevigata (Ratzeburg, 1848)
    • Enytus apostatus (Gravenhorst, 1829)
    • Enytus obliteratus (Cresson, 1864)
    • Euryproctus curvator Davis, 1897
    • Gelis agilis (Fabricius, 1775)
    • Gelis areator (Panzer, 1804)
    • Glypta varicoxa Thomson, 1889
    • Gregopimpla inquisitor (Scopoli, 1763)
    • Hypsicera curvator (Fabricius, 1793)
    • Itoplectis alternans (Gravenhorst, 1829)
    • Itoplectis aterrima Jussila, 1965
    • Itoplectis conquisitor (Say, 1835)
    • Itoplectis maculator (Fabricius, 1775)
    • Itoplectis quadricingulata (Provancher, 1880)
    • Itoplectis tunetana (Schmiedeknecht, 1914)
    • Lycorina fici Seyrig, 1932
    • Mesochorus testaceus Gravenhorst, 1829
    • Mesochorus vittator (Zetterstedt, 1838)
    • Oiorhinus pallipalpis Wesmael, 1845
    • Parania geniculata (Holmgren, 1857)
    • Pimpla spuria Gravenhorst, 1829
    • Pimpla turionellae (Linnaeus, 1758)
    • Scambus brevicornis (Gravenhorst, 1829)
    • Scambus calobatus (Gravenhorst, 1829)
    • Scambus elegans (Woldstedt, 1877)
    • Scambus hispae (Harris, 1835)
    • Scambus pomorum (Ratzeburg, 1848)
    • Scambus sagax (Hartig, 1838)
    • Temelucha platynotae (Cushman, 1917)
    • Triclistus anthophilae Aeschlimann, 1983
    • Triclistus congener (Holmgren, 1858)
    • Triclistus emarginalus (Say, 1829)
    • Triclistus laevigatus (Ratzeburg, 1844)
    • Triclistus propinquus (Cresson, 1868)
    • Triclistus pubiventris Thomson, 1887
    • Xanthopimpla habermehli Krieger, 1915

Rilevanza economica

La specie Choreutis nemorana (tignola del fico o antofila), ben rappresentata nell'intera zona mediterranea, attacca prevalentemente Ficus carica (fico comune), arrecando solo lievi danni tranne in rare occasioni. Le contromisure possono comprendere l'utilizzo di nemici naturali, quali alcuni imenotteri parassitoidi, l'impiego di insetticidi selettivi, applicati all'inizio dell'infestazione, ma anche la semplice raccolta manuale delle prime foglie interessate dalla presenza delle larve.^[19][20]

La congenere Choreutis pariana (antofila o tignola delle foglie del melo) ha una distribuzione paleartica, ma è assente nel Nordafrica; attacca diverse rosacee, con una preferenza per Malus domestica (melo comune). I danni a carico delle colture non sono frequenti, ma possono essere rilevanti a causa delle due/tre generazioni annue che la specie è in grado di sviluppare. I metodi di lotta sono analoghi a quelli riportati per C. nemorana.^[19][21]

Tebenna bjerkandrella, infine, scheletrizza le foglie di svariate specie di Asteraceae, tra cui anche Cynara scolymus (carciofo); in alcune zone dell'Italia meridionale può sviluppare anche tre generazioni l'anno.^[19][22][23]

Distribuzione e habitat

Il taxon è presente in tutti i continenti, a eccezione dell'Antartide, con una ricchezza in specie più consistente nelle ecozone paleartica, indomalese ed australasiana.^[4][5][9]

L'habitat è rappresentato da zone verdi, boschi e foreste, a partire dalle fasce temperate fino a quella tropicale.^[5]

Tassonomia

Choreutidae Stainton, 1858 - Manual Br. Butterflies and Moths 2: 157^[1] - genere tipo: Choreutis Hübner, 1825 - Verz. bek. Schmett.: 373.^[6]

Il genere tipo Choreutis, inizialmente ascritto fra i "Tortrices",^[6] fu portato nei Glyphipterigidae da Fletcher (1929),^[24] e in seguito fu spostato all'interno dei Sesioidea (Brock, 1971;^[25] Heppner, 1977;^[26] Heppner & Duckworth, 1981^[12]). Minet (1986,^[27] 1991^[11]), tuttavia, non considerò valide le sinapomorfie con il predetto assemblamento, e preferì inserire il taxon in una superfamiglia a sé.^[4][28]

Chiave dicotomica per la determinazione delle sottofamiglie

Viene di seguito riportata una chiave dicotomica per il riconoscimento della sottofamiglia di appartenenza, sulla scorta di quella proposta da Heppner & Duckworth (1981),^[12] in cui è preso in considerazione il solo stadio adulto; va specificato che oltre alle due sottofamiglie qui riportate, venne in seguito riconosciuta quella delle Millieriinae (in questa chiave ricompresa nelle Choreutinae), che fu poi elevata al rango di famiglia (Millieriidae) da Rota nel 2011.^[29]

1 Ala anteriore munita di termen chiaramente arrotondato; chorda assente Brenthiinae 1' Ala anteriore munita di apice più o meno appuntito e termen alquanto squadrato; chorda presente, talvolta vestigiale Choreutinae

Sottofamiglie e generi

La famiglia si compone di due sottofamiglie, per un totale di 20 generi e 406 specie, diffuse in tutti i continenti; la sottofamiglia Choreutinae, unica presente in Europa, conta nel continente 4 generi (presenti anche in Italia) e 17 specie, di cui solo 9 si trovano anche in Italia; non è riportato alcun endemismo italiano:^{[3][4][5][30][31][32][33][34]}

• Brenthiinae Heppner in Heppner & Duckworth, 1981 - Smiths. Contr. Zool. 314: 48^[12] (2 generi, 50 specie; tutti i continenti tranne l'Europa)
  • Brenthia Clemens, 1860 - Proc. Acad. Nat. Sci. Philad. 12: 172^[35] (44 specie; tutti i continenti tranne l'Europa)
    • = Microaethia Chambers, 1878 - Can. Ent. 10(4): 76^[36]
  • Litobrenthia Diakonoff, 1978 - Zool. Verh. Leiden 160(1): 28, figg. 18-22^[37] (6 specie; India, Cina, Taiwan e Giappone)
• Choreutinae Stainton, 1854 - Manual Br. Butterflies and Moths 2: 157^[1] (18 generi, 356 specie; cosmopolita)
  • Alasea Rota, 2008 - Zootaxa 1933: 14^[38] (1 specie; Costa Rica)
  • Anthophila Haworth, 1811 - Lepid. Britannica (3): 471^[39] (70 specie; tutti i continenti tranne l'Oceania; 3 specie europee, di cui una sola in Italia)
    • = Antophila (sic) Bleszynski, Razowski & Zukowski, 1965 - Acta zool. cracov. 10(5): 413^[40]
    • = Siamethis (sic) Klimesch, 1968 - Posebno Izd. prirod. Muz. Skopje 5: 150^[41]
    • = Simaethis Leach, 1815 - in Brewster, Edinburgh Ency. 9: 135^[42]
    • = Simaetis Kautz, 1931 - Verh. K.K. zool.-bot. Ges. Wien 80: 28^[43]
    • = Simethis Bleszynski, Razowski & Zukowski, 1965 - Acta zool. cracov. 10(5): 413^[40]
    • = Simoethis Desmarest, 1848 - in Orbigny, Dict. univl Hist. Nat. 11: 617^[44]
    • = Symaethis Bruand, 1850 - Mem. Soc. Emul. Doubs (1) 3(2, livr. 3, 4): 101^[45]
    • = Symaethis Dunning & Pickard, 1858 - Accent. List Brit. Lep.: 73^[8]
    • = Xylopoda Berthold, 1827 - in Latreille, Nat. Familien Thierreichs: 484^[46]
    • = Xylopodo (sic) Morris, 1872 - Nat. Hist. Br. Moths ([Edn 3]) 3: iv^[47]
  • Asterivora Dugdale, 1979 - N.Z. J. Zool. 6: 461^[48] (23 specie; Australia e Nuova Zelanda)
    • = Asterophora Horning & Greenwood, 1977 (nomen nudum) - N.Z. Ent. 6(3): 295^[49]
  • Caloreas Heppner, 1977 - Proc. ent. Soc. Wash. 79(4): 631^[26] (18 specie; America settentrionale, centrale e meridionale)
  • Choreutis Hübner, 1825 - Verz. bek. Schmett. (23-27): 373^[6] (96 specie, cosmopolita; 3 specie in Europa e in Italia) (genere tipo)
    • = Allonomyia [sic] Ferguson, 1975 - Tech. Bull. U.S. Dep. Agric. 1521: 41^[50]
    • = Allononyma Busck, 1904 - Proc. U.S. Natn. Mus. 27(1375): 745^[51]
    • = Allonyma [sic] Fracker, 1915 - Ill. biol. monogr. 2: 82^[52]
    • = Chloreutis [sic] Viette, 1948 - Mém. Inst. sci. Madag. (A) 1: 40^[53]
    • = Chorentes [sic] Morris, 1871 - Nat. Hist. Br. Moths 3: iv^[54]
    • = Chorentis [sic] Turner, 1898 - Trans. R. Soc. S. Aust. 22: 203^[55]
    • = Choreutes [sic] Treitschke, 1835 - In Ochsenheimer, Schmett. Eur. 10(3): 31^[56]
    • = Choreuthis [sic] Hackman, 1947 - Notul. ent. 26(3-4): 71^[57]
    • = Choreutidia Sauber, 1902 - in Semper, Die schmett. Philipp. ins. 2(6): 702^[58]
    • = Cloreutis [sic] Kautz, 1931 - Verh. K.K. zool.-bot. Ges. Wien 80: 28^[43]
    • = Entomoloma Ragonot, 1875 - Ann. Soc. ent. Fr. (5) 5 (Bull.): xliii^[59]
    • = Eutromula Frölich, 1828 - Enum. Tortr. Würt.: 11^[60]
    • = Hemerophila Hübner, 1806 (soppr. ICZN Op. 97) - Tentamen determinationis digestionis: 2^[61]
    • = Hemerophila sensu Fernald, 1900 - Can. Ent. 32(8): 239^[62]
    • = Macropia O. Costa, 1836 - Fauna Reg. Nap.: 196^[63]
    • = Orchemia sensu Fernald, 1900 - Can. Ent. 32(8): 238^[62]
  • Hemerophila Hübner, 1817 - Samml. exot. Schmett. 1: tav. 213^[64] (9 specie; America centrale e meridionale)
    • = Gauris Hübner, 1821 - Index exot. Lepid.: [1]^[65]
    • = Guaris [sic] Fernald, 1900 - Can. Ent. 32(8): 236^[62]
    • = Walsinghamia Riley, 1889 - Proc. Ent. Soc. Wash. 1(3): 157^[66]
  • Melanoxena Dognin, 1910 - Annls Soc. ent. Belg. 54: 121^[67] (1 specie; Colombia)
  • Niveas Rota, 2013 - in Rota & Miller, ZooKeys 355: 29^[68] (2 specie; Kenya, Papua Nuova Guinea e Isole Salomone)
  • Ornarantia Rota & Wahlberg, 2012 - Zool. Scr. 41: 536^[69] (20 specie; America centrale e meridionale)
  • Peotyle Diakonoff, 1978 - Zool. Verh. Leiden 160(1): 23^[37] (2 specie; India e Cina)
  • Prochoreutis Diakonoff & Heppner, 1980 - Ent. Ber. Amst. 40(12): 196^[70] (36 specie; Africa, Europa, Asia, America settentr. e centrale; 7 specie in Europa, di cui 3 in Italia)
  • Rhobonda Walker, 1863 - List Spec. lepid. Insects Colln Br. Mus. (28): 424^[71] (3 specie; America centrale, meridionale e Indonesia)
  • Saptha Walker, 1864 - List Spec. lepid. Insects Colln Br. Mus. (30): 1015^[72] (17 specie, Asia e Oceania)
    • = Badera Walker, 1866 - List Spec. lepid. Insects Colln Br. Mus. (35): 1819^[73]
    • = Chordates Snellen, 1877 - Tijdschr. Ent. 20: 49^[74]
    • = Choredates [sic] Pagenstecher, 1884 - Jahrb. Nass. Ver. Nat. 37: 289^[75]
    • = Saphtha [sic] Walsingham & Durrant, 1900 - Cat. east. and Aust. Lepid. Heterocera Colln Oxf. (2): 567^[76]
  • Tebenna Billberg, 1820 - Enum. Ins. Mus. Billb.: 90^[77] (28 specie; cosmopolita; 4 specie in Europa, di cui 2 in Italia)
    • = Porpe Hübner, 1825 - Verz. bek. Schmett. (23-27): 373^[6]
    • = Tebeuna [sic] Danilevsky, 1969 - Ent. Obozren. 48: 922^[78]
  • Telosphrantis Meyrick, 1932 - Trans. R. ent. Soc. Lond. 80: 116^[79] (1 specie; Etiopia)
  • Tortyra Walker, 1863 - List Spec. lepid. Insects Colln Br. Mus. (28): 510^[71] (23 specie; America settentrionale, centrale e meridionale)
    • = Choregia Felder & Rogenhofer, 1875 - Reise öst. Fregatte Novara (Zool.) (9) 2(2): 6^[80]
    • = Choregia Zeller, 1877 - Horae Soc. ent. ross. 13: 191^[81]
  • Trichocirca Meyrick, 1920 - in Alluaud & Jeannel, Voyage de Ch. Alluaud et R. Jeannel en Afrique Orientale. II Microlepidoptera (Lépid.): 85^[82] (1 specie; Kenya)
  • Zodia Heppner, 1979 - Proc. ent. Soc. Wash. 81(4): 685^[83] (5 specie; America centrale e meridionale)

Sinonimi

Sono stati riportati i seguenti sinonimi:^[2][30]

• Choreuthidae [sic] Hackman, 1947 - Notul. ent. Helsinki 26: 71^[57]
• Choreutina von Heinemann & Wocke, 1877 - Schmett. Deutschl. Schweiz 2 (II, 2): 1^[84] - genere tipo: Choreutis Hübner, 1825^[6]
• Hemerophilidae Busck, 1910 - Bull. Dept. Agric. Trinidad 9: 242^[85] - genere tipo: Hemerophila Hübner, 1817^[64]
• Hemerophilidae Walsingham, 1910 - Ent. Monthly Mag. 46: 257^[86] - genere tipo: Hemerophila Hübner, 1817^[64]
• Simaethidae Cotes & Swinhoe, 1889 - Cat. Moths India (5): 700^[87] - genere tipo: Simaethis Leach, 1815^[42] (= Anthophila Haworth, 1811)^[39]
• Simaethinae Janse, 1932 - Moths of South Africa 1: 61^[88] - genere tipo: Simaethis Leach, 1815^[42] (= Anthophila Haworth, 1811)^[39]

Filogenesi

Di seguito è mostrato un albero filogenetico ricavato da quello proposto da Kristensen nel 1999:^[4]

Ditrysia .

Simaethistoidea

  .

Tineoidea

  . .

Gracillarioidea

  .

Yponomeutoidea

  .

Gelechioidea

  Apoditrysia .

Galacticoidea

  .

Zygenoidea/Cossoidea/Sesioidea

  .

Choreutoidea

  .

Tortricoidea

  .

Urodoidea

  .

Schreckensteinioidea

  .

Epermenioidea

  .

Alucitoidea/Pterophoroidea

  .

Obtectomera

       

Qui sotto viene invece riportato un albero filogenetico ricavato dallo studio di Heikkila et al. (2015);^[89] si osservi l'affinità genetica tra i Choreutidae e gli Immidae, all'interno degli Apodytrisia:

Apoditrysia .

Tanaoctena dubia

  . . . . .

Cadmogenes literata

  .

Millieriidae

    . .

Schreckensteinioidea

  .

Urodoidea

      . .

Douglasioidea

  .

Pterophoroidea

      . . .

Immoidea

  .Choreutoidea .

Brenthiinae

  .Choreutinae .

Saptha

  . .

Choreutis

  . .

Anthophila

  . .

Asterivora

  .

Prochoreutis

              . . .

Galacticoidea

  .

Tortricoidea

    . . . .

Alucitoidea

  . .

Epermenioidea

  .

Carposinoidea

      .

Gelechioidea

    .

Obtectomera

           

Alcune specie

Adulto

Larva

Conservazione

Nessuna specie appartenente a questa famiglia è stata inserita nella Lista rossa IUCN.^[90]

Note

Bibliografia

Pubblicazioni

Testi