Die groot wasmot (Galleria mellonella L.; Eng: Greater Wax Moth, Ned: Wasmot, Duits: Große Wachsmotte) is 'n insek uit die familie Pyralidae.
Die nagvlinder se ruspe vreet veral die was wat deur heuningbye vervaardig word en hulle lê hul eiers in die bye se korwe. Byeboere vrees hierdie insek omdat hulle die heuningkoekselle aantas en die bye daarna hierdie selle sal opgee. Hierdie insek se ruspe word egter deur mense wat byvoorbeeld verkleurmannetjies aanhou as voer gekweek. Die volwasse wasmotte vreet niks meer. Hulle vlerke is ongeveer 2,5 cm wyd.[1] Die ruspe is ook vir die mens eetbaar.[2]
Navorsing van Bombelli, Howe en Bertocchini het in 2017 getoon dat hulle ook polimere soos poliëtileen en polipropileen kan vreet. Hulle kan in 40 minute gate vreet deur 'n plastieksakkie en verteer dit na glikol (CH2OH)2.[3]
Hierdie mot kan uiters hoe klankfrekwensies hoor, tot 300 kHz, wat hoër is as wat hulle vyand die vlermuis kan waarneem.[4]
Die groot wasmot (Galleria mellonella L.; Eng: Greater Wax Moth, Ned: Wasmot, Duits: Große Wachsmotte) is 'n insek uit die familie Pyralidae.
Die nagvlinder se ruspe vreet veral die was wat deur heuningbye vervaardig word en hulle lê hul eiers in die bye se korwe. Byeboere vrees hierdie insek omdat hulle die heuningkoekselle aantas en die bye daarna hierdie selle sal opgee. Hierdie insek se ruspe word egter deur mense wat byvoorbeeld verkleurmannetjies aanhou as voer gekweek. Die volwasse wasmotte vreet niks meer. Hulle vlerke is ongeveer 2,5 cm wyd. Die ruspe is ook vir die mens eetbaar.
La poliya de la cera (Galleria mellonella), ye una especie d'inseutu lepidópteru del suborde Glossata y del cladu Ditrysia. Ye de distribución mundial. (Linnaeus, 1756) Apuerta a una plaga agrícola nos truébanos d'abeyes melíferas.[1] [2][3]
Caparina de constitución ancha y robusta y color de base marrón con irisaciones plomices. Nel marxe de les nales presenta flecos con matices clarooscuros, y na metá inferior delles llinies negres llonxitudinales. Les nales posteriores son de color gris claro, con nervaciones sobresalientes.
La caparina y la so gata habiten en cortiles coloniales con setos d'abeyes. La canesba aliméntase de cera d'abeya.
La poliya de la cera (Galleria mellonella), ye una especie d'inseutu lepidópteru del suborde Glossata y del cladu Ditrysia. Ye de distribución mundial. (Linnaeus, 1756) Apuerta a una plaga agrícola nos truébanos d'abeyes melíferas.
L'arna de la cera o poll de les arnes[1] (Galleria mellonella) és una espècie d'arna dins la família Pyralidae. És l'únic membre dins el gènere Galleria. Es troba en molts continents, incloent Europa i l'adjacent Euràsia (on se suposa que és originària). S'ha introduït a Amèrica del Nord i Austràlia.
El seu parent proper, l'arna petita de la cera (Achroia grisella), és també un membre de la tribu Galleriini de la subfamília de Pyralid Galleriinae. L'arna major de la cera es de l'espècie tipus d'aquesta tribu i subfamília.
Es fa servir d'organisme model, però també és una plaga agrícola. En apicultura destrossa els ruscs d'abelles al menjar-se la seva cera. L'eruga menja la cera dels ruscs i si la colònia d'abelles és poc nombrosa, pot arruïnar-la completament. No tan sovint es troba en nius de borinots i vespes o alimentant-se de figues seques.[2]
Els adults tenen una envergadura alar de 30–41 mm. Vola de maig a octubre en els llocs de clima temperat com Bèlgica i Països Baixos. Les seves larves són un organisme model excel·lent per les proves in vivo de toxicologia i patogenicitat, poden substituir l'experimentació en mamífers. També permet estudiar la immunitat cel·lular i la immunitat humoral del sistema immunitari dels insectes.
L’eruga de l’arna de la cera es considera un excel·lent organisme model per a la toxicologia in vivo i en proves de toxicologia i patogenicitat, substituint l'ús de petits mamífers en aquest tipus d’experiments.[3] Les larves són també models molt adequats per a l'estudi del sistema immune innat. En genètica, poden ser utilitzades per estudiar l'esterilitat heretada en insectes. Cal tenir en compte que la immunitat cel·lular i humoral són part de la immunitat adquirida, que és dona només en vertebrats. Els insectes només tenen immunitat innata.
Els experiments amb erugues d’arna de la cera infectats, donen suport a la hipòtesi que l'estilbenoide bacterià 3,5-dihidroxi-4-isopropil-trans-estilbè té propietats antibiòtiques que ajuden a minimitzar la competència d'altres microorganismes, i evita la putrefacció del cadàver d'insecte infectades pel nematode entomòfag Heterorhabditis, un hoste en si mateix del bacteri Photorhabdus.[4]
La G. mellonella es considera capacitada per sentir freqüències ultrasòniques vora els 300 kHz, possiblement la sensibilitat a la freqüència més alta de qualsevol animal.[5]
L'eruga de G. mellonella ha esdevingut d'interès per la capacitat dels seus bacteris intestinals per degradar el polietilè (PE).[6] Les larves de l'arna descomponen el polietilè (PE) a etilenglicol. S’ha pogut documentar una pèrdua de massa de 13% durant 14 hores en làmines de PE.[7][8][9][10]
S'ha descrit moltes vegades sota sinònims no vàlids:[11]
Sinònims junior i per tant invàlids del gènere Galleria són:[11]
L'arna de la cera o poll de les arnes (Galleria mellonella) és una espècie d'arna dins la família Pyralidae. És l'únic membre dins el gènere Galleria. Es troba en molts continents, incloent Europa i l'adjacent Euràsia (on se suposa que és originària). S'ha introduït a Amèrica del Nord i Austràlia.
El seu parent proper, l'arna petita de la cera (Achroia grisella), és també un membre de la tribu Galleriini de la subfamília de Pyralid Galleriinae. L'arna major de la cera es de l'espècie tipus d'aquesta tribu i subfamília.
Zavíječ voskový (Galleria mellonella Linaeus, 1758) je drobný motýl z rodu zavíječovitých. Jde o běžného škůdce ve včelařských provozech. Svým vývojem je vázán na prostředí včelího úlu. Enzymatická výbava jeho trávicí soustavy umožňuje trávení včelího vosku – po chemické stránce komplikované a těžko odbouratelné struktury.[1] Dokáže strávit dokonce i polyethylen, jeden z nejběžnějších plastů. Tato jeho unikátní vlastnost je předmětem vědeckého výzkumu.[2][3]
Motýl zavíječe voskového je dlouhý 8-16 mm o rozpětí křídel až 38 mm.
Po spáření naklade samička do trhlinek a štěrbin ve stěnách úlu vajíčka. Po pěti dnech se líhnou velmi pohyblivé larvičky. V úlu se rozptýlí a zavrtají do voskového díla. Nejprve vykousávají chodbičky ve středové ose plástu (v mezistěně). Později konzumují i voskové přihrádky buněk, až z plástu zůstane chumáč pavučiny a trusu. Během svého vývoje se larvy sedmkrát svlékají. Po celé vývojové období larvy produkují snovacími žlázami hedvábné vlákno. Hedvábí slouží jako vystýlka ve vykousaných chodbičkách ve včelích plástech. Včely nemohou vystýlku nijak překonat a larvy jsou před nimi v bezpečí. V závěrečné fázi před zakuklením se larvy zapřádají do pevného zámotku pro podobný ochranný účel. Vylíhlý dospělec už potravu nepřijímá. Jeho jediným posláním je spáření a nakladení vajíček.
V přirozeném ekosystému má zavíječ nezastupitelnou roli při odbourávání voskové hmoty. Včelí vosk je organická látka vykazující vysokou odolnost proti rozkladu.
V podmínkách umělého chovu včel se zavíječ neváže jen na prostředí úlu, ale napadá též plásty uskladněné mimo úl.
Účinná ochrana proti nežádoucímu přemnožení zavíječe:
Zavíječ voskový je významným objektem základního výzkumu v experimentální entomologii. Tento motýl je využíván jako modelový organismus v laboratořích zabývajících se výzkumem fyziologie, biochemie, patologie a metabolismu hmyzu. Zavíječ voskový je citlivý na hmyzí hormony (ekdysteroidy, juvenilní hormony, bílkovinné neurohormony). Je proto vhodným objektem pro studium hmyzí metamorfózy. Oblíbenost zavíječe pro výše zmiňované výzkumy je podmíněna též snadným chovem v umělých podmínkách. Jako krmení stačí med, včelí vosk a obilný šrot.[1]
Zavíječ voskový (Galleria mellonella Linaeus, 1758) je drobný motýl z rodu zavíječovitých. Jde o běžného škůdce ve včelařských provozech. Svým vývojem je vázán na prostředí včelího úlu. Enzymatická výbava jeho trávicí soustavy umožňuje trávení včelího vosku – po chemické stránce komplikované a těžko odbouratelné struktury. Dokáže strávit dokonce i polyethylen, jeden z nejběžnějších plastů. Tato jeho unikátní vlastnost je předmětem vědeckého výzkumu.
Die Große Wachsmotte (Galleria mellonella) ist ein Kleinschmetterling. Sie gehört zur Unterfamilie der Wachsmotten (Galleriinae) und damit zur Familie der Zünsler (Pyralidae).
Die Falter erreichen eine Flügelspannweite von 20 bis 40 Millimeter, wobei die Weibchen von Galleria mellonella größer werden als die Männchen. Die Maxillarpalpen sind klein und vorgestreckt, der Rüssel ist nur schwach entwickelt. Charakteristisch für die Große Wachsmotte ist der konkave Außenrand des Vorderflügels, was bei den Männchen stärker ausgeprägt ist als bei den Weibchen. Die Farbe dieser Vorderflügel ist überwiegend aschgrau mit einer bräunlichen Schattierung am Vorderrand der Vorderflügel. Der Innenrand ist dagegen hellgelb gefärbt und weist große, rotbraune Flecken auf. Die Saumlinie der Vorderflügel erscheint dunkel und die Fransen am Flügel rotgrau. Die Hinterflügel sind bei den Männchen von Galleria mellonella grau mit schwarzbraunem Saum, bei den Weibchen der Großen Wachsmotte dagegen gelblichweiß. Die Vorderflügellänge beträgt 10 bis 15 Millimeter.[1]
Größe und Färbung der Falter können stark variieren, da sie sowohl von der Zusammensetzung der Nahrung der Larve, als auch von der individuellen Entwicklungsdauer abhängen.
Als eine weit verbreitete Art wurde die große Wachsmotte auch unter einer Anzahl von jetzt ungültigen Synonymen beschrieben.
Tagsüber sind die Falter inaktiv, man findet sie häufig unter Bienenstöcken. Sie fliegen vor allem in der Dämmerung und nachts, wobei sie an künstlichen Lichtquellen oder an zuckerhaltigen Ködern angetroffen werden können. Die Falterweibchen legen ihre Eier, die eine durchschnittliche Größe von 0,5 mm haben in Eipaketen bis zu 200 Stück innerhalb von Bienenstöcken und den Lagerorten der Leerwaben ab. Ein Wachsmottenweibchen legt während seines Lebens bis zu 1000 Eier. Je nach Temperaturniveau und abhängig von der Luftfeuchtigkeit schlüpfen nach 5 bis 35 Tagen 1 mm große Räupchen. Die jungen Raupen ernähren sich vom Bodenmüll in den Waben. Später leben sie gesellig in einem Gespinst und fressen an den Waben. Sie ernähren sich vor allem von Kotrückständen der Bienenbrut, Pollenresten und von Bienenwachs. Nach mehrfachen Häutungen wachsen die Rankmaden so bis auf eine Größe von 2–3 cm heran und schädigen dabei das Wachswerk der Honigbienen, aber auch Hummelvölker.
Die ausgewachsenen Larven verpuppen sich in einem weißen, spindelförmigen Kokon in der Wabe, aber auch sehr häufig außerhalb. Dabei bevorzugen die Raupen vor dem Verpuppen möglichst unzugängliche und geschützte Stellen der Holzteile in den Bienenbeuten. Diese werden dazu von den Raupen halbspindelförmig ausgenagt.
Nach einer Puppenruhe in einem weißlichen Kokon schlüpfen nach 45 Tagen die neuen Falter. Bei einer Temperatur unter 9 Grad Celsius kommt die Entwicklung zum Stillstand. Dabei können sowohl Eier als auch Larven Temperaturen unter dem Gefrierpunkt ertragen und die gesamte Entwicklungszeit bis zu drei Monate betragen. Eier, die im Herbst abgelegt werden überwintern bis zum Frühjahr, ebenso wie Raupen im Kokon. Sobald die Temperaturen ansteigen setzen sie dann ihre Entwicklung fort.[4]
Die geographische Verbreitung der Großen Wachsmotte ist stark an die der Honigbiene (Apis mellifera) gekoppelt. Der nachtaktive und Dunkelheit liebende Falter stammt vermutlich aus Europa und dem angrenzenden, asiatischen Raum. Mit der weltweiten Verbreitung der Honigbiene durch den Menschen ist auch die Große Wachsmotte mittlerweile weltweit verbreitet.[1]
Die Falter fliegen in mehreren Generationen von Mai bis Oktober. Rankmaden können das ganze Jahr über vorkommen, wobei sie in den kalten Monaten (unter 9 Grad Celsius) eine Entwicklungspause einlegen. Diese verbringen sie geschützt in einem selbstgesponnenen Kokon.
Die Schallwahrnehmung erfolgt, wie bei anderen Schmetterlingen üblich, über Tympanalorgane. Diese liegen bei der Großen Wachsmotte als zwei Hohlräume im Brustbereich, die von dünnen Membranen bedeckt sind. Die Membranen wirken als Trommelfell. Geraten sie in Schwingung, werden über Zellbrücken darunterliegende Sensoren mechanisch erregt. Ein Nervenimpuls entsteht, der als Geräusch wahrgenommen wird. Hierfür reicht bereits eine Schwingung von 0,1 nm aus.
Nach Untersuchungen einer Forschergruppe um Hannah Moir von der University of Strathclyde, Glasgow, Schottland kann die Große Wachsmotte von allen Tieren die höchsten Töne wahrnehmen – bis zu 300 kHz. Das ist doppelt so hoch wie beim Schwammspinner. Es übertrifft sogar deutlich den Bereich der Ultraschallwahrnehmung von Fledermäusen, deren Wahrnehmungsgrenze bei 200 kHz liegt.
Bisher rätseln die Forscher noch über den Sinn dieser Anpassung. Sie könnte ein Schutz sein vor den Hauptfressfeinden, den Fledermäusen. Allerdings gibt es derzeit keine Art, die Frequenzen von mehr als 212 kHz benutzt. Auch für Sexuallockrufe ist diese Frequenz viel zu hoch. Die größte Empfindlichkeit haben hier die Weibchen im Bereich von 90 bis 95 kHz, in dem auch die Männchen ihre Lockrufe ausstoßen. Neben der Möglichkeit, dass es Fledermausarten gibt, die höhere Frequenzen als bisher bekannt benutzen, könnte ein Grund in der schnelleren Reaktionszeit liegen, die sich umgekehrt proportional zur Bandbreite verhält. Bei 300 kHz beträgt diese 10 μs, während z. B. Eulenfalter mit ihrem weniger gut ausgeprägten Gehör 60 μs benötigen. Eine solch schnellere Reaktion kann bei der Wahrnehmung von Fressfeinden einen entscheidenden Überlebensvorteil bringen.[5][6]
Der Schaden für den Imker besteht zum einen darin, dass Wachs gefressen wird und die Lager-Waben zerstört werden, die im Betrieb noch eingesetzt werden sollen. Beim Eindringen der Wachsmotten in die Völker kann die Brut der Bienen durch das Gespinst abgetötet werden. Dies kommt in der Regel selten und nur bei schwachen Völkern vor. Massiver sind die Schäden an den Lagerwaben, die bei starkem Befall (siehe Foto) unbrauchbar sind und vernichtet werden müssen. Die südlichen USA verlieren aufgrund dieses einen Schädlings 4–5 % ihres Jahresgewinns.
In der freien Natur sorgen die Wachsmotten dafür, dass der Wabenbau von alten, verlassenen oder abgestorbenen Bienennestern nachhaltig zerstört wird und damit wieder Platz für eine neue Besiedlung durch die Bienen vorhanden ist.
In manchen Labors und Forschungsinstituten wird Galleria mellonella gehalten, um Forschungen durchzuführen. Als Versuchstier eignet sich die Große Wachsmotte gut, weil die Aufzuchtvoraussetzungen günstig sind: Die Raupen sind ganzjährig verfügbar und das Futter ist leicht und preiswert bei Imkern zu beschaffen. Außerdem haben die Tiere eine hohe Vermehrungsrate und einen kurzen Entwicklungszyklus. Galleria mellonella ist für manche Forscher quasi das „Haustier der Zoologen“.
Im April 2017 wurde die Entdeckung der italienischen Biologin Federica Bertocchini publiziert, wonach sich die Raupen der Großen Wachsmotte auch von Polyethylen ernähren und dieses zu Ethylenglycol abbauen können. Nun soll erforscht werden, welches Enzym dies ermöglicht und ob daraus eine Möglichkeit zum Abbau von Plastikmüll entwickelt werden kann.[7][8] Nach einer Veröffentlichung aus dem Jahr 2014 wurde allerdings schon früher eine Motte (Dörrobstmotte, Plodia interpunctella) bekannt, die Polyethylen abbauen kann. Dabei wurden auch zwei Bakterien (Enterobacter asburiae und eine unbestimmte Art der Gattung Bacillus) identifiziert, die im Magen der Motte vorkommen und auf Polyethylen-Filmen mikrometergroße Gruben und Löcher hinterlassen.[9]
Von Anglern wird die Raupe der Galleria mellonella häufig unter dem Namen „Bienenmade“ oder „Honigmade“ als Lebendköder verwendet. Ebenso sind Wachsmottenraupen als Lebendfutter in der Terraristik sehr beliebt, da sie auch von Laien problemlos herangezogen werden können.
Die Raupe der Großen Wachsmotte ist essbar und wird als Speiseinsekt genutzt. Sie enthält 39–42 % Eiweiß pro 100 g.[10]
Wachsmotten können von Schlupfwespen (Apanteles galleriae, Apechthis ontario, Trichogramma evanescens und Habrobracon hebetor) befallen werden. 1–2 Eier werden von den erwachsenen Apanteles galleriae auf jede Larve gelegt, wobei es nur einem gelingt, den Wirt zu parasitieren und zu überleben. Die Larve des Parasiten ernährt sich von Wachsmotten während deren Puppenruhe und zerreißt den Wirtskörper beim Verlassen um sich selbst zu verpuppen.[11] Es ist jedoch unwahrscheinlich, dass dieser Parasit in größerer Zahl in ein starkes, gesunden Bienenvolk eindringen kann, da er von Bienen vom Bienenstock ferngehalten wird. Zudem ist es schwierig in den Völkern durch die Dunkelheit zu navigieren, um ihren Wirt zu finden.[12]
Habrobracon hebetor parasitiert die Rankmaden und legt ihre Eier außen auf die Larven verschiedener Lebensmittelmotten (Mehlmotten, Dörrobstmotten, Speichermotten u. a.). In einer Schädlingslarve wachsen so mehrere Nützlinge heran, die so die Entwicklung der Wachsmotte zum Falter verhindern. Zur Verpuppung spinnen sich die Nützlingslarven in einem Kokon ein. Der gesamte Entwicklungszyklus dauert bei konstantem Temperaturniveau von 25 Grad Celsius etwa zwei Wochen.[13]
Trichogramma evanescens ist sehr klein und parasitiert die Eier der Wachsmotte in die sie ihre eigenen Eier ablegt. Anstatt einer Mottenlarve schlüpft so eine Schlupfwespe. Dieser Kreislauf wiederholt sich, solange Motteneier vorhanden sind. Finden die Schlupfwespen keine Motteneier mehr, so sterben sie. Die Nützlinge sind nur etwa 0,3 bis 0,4 mm klein und mit bloßem Auge kaum zu erkennen.[13]
Die Große Wachsmotte (Galleria mellonella) ist ein Kleinschmetterling. Sie gehört zur Unterfamilie der Wachsmotten (Galleriinae) und damit zur Familie der Zünsler (Pyralidae).
Galleria mellonella, the greater wax moth or honeycomb moth, is a moth of the family Pyralidae. G. mellonella is found throughout the world.[1] It is one of two species of wax moths, with the other being the lesser wax moth. G. mellonella eggs are laid in the spring, and they have four life stages. Males are able to generate ultrasonic sound pulses, which, along with pheromones, are used in mating. The larvae of G. mellonella are also often used as a model organism in research.
The greater wax moth is well known for its parasitization of honeybees and their hives.[1][2] Because of the economic loss caused by this species, several control methods including heat treatment and chemical fumigants such as carbon dioxide have been used.[3]
The caterpillar of G. mellonella has attracted interest for its ability to degrade polyethylene plastic.
G. mellonella was first reported as a pest in Asia, but then spread to northern Africa, Great Britain, some parts of Europe, northern America, and New Zealand.[3] The species is now distributed throughout the globe.[1] It has been reported in twenty-seven African countries, nine Asian countries, four North American countries, three Latin American countries, Australia, ten European countries, and five island countries. It is projected that the pest may spread further, especially due to climate change.[3]
G. mellonella can be found where honeybees are cultivated.[2]
G. mellonella larvae parasitize the honeybee. Eggs are laid in the cracks and crevices inside the hive, which minimizes egg detection. Once eggs hatch, they feed on the midrib of the wax comb, the cast skins of bee larvae, pollen, and small quantities of propolis and honey. Live larvae are never eaten.[2]
Shortly after emergence, G. mellonella females lay their eggs in the small cracks and crevices inside a beehive.[3] Females prefer to lay their eggs in strong, healthy bee colonies over weaker colonies,[3] but weaker colonies have a higher rate of G. mellonella infestation.[4] Eggs are laid in clusters of varying number depending on the region. Clusters of 50-150 eggs have been reported in the United States,[3] whereas clusters of 300-600 eggs have commonly been reported in India.[5] Up to 1800 eggs have been deposited by a single female.[5][4]
The life cycle of G. mellonella proceeds through four stages: egg, larvae, pupae and adult.[3] Generally, eggs are laid in the early spring and the moth undergoes four to six generations annually.[2][3] By December, the eggs, larvae, and pupae enter diapause in wait for warmer weather.[3]
The effects of temperature and humidity on life stages have been most thoroughly studied. Temperatures around 29–33 °C (84–91 °F) and humidity levels around 29-33%[3] are optimal for development, though studies in Kansas have shown normal larval development at temperatures as high as 37 °C (99 °F).[4] Average temperatures higher than 45 °C (113 °F) have been shown to be lethal for larva.[4] Lower temperatures at 23 °C (73 °F), however, resulted in only part of the life cycle being completed.[4] At temperatures below 0 °C (32 °F), even short exposures kill larva and adults.[4]
Intraspecific factors also affect life stages: cannibalism of instars in the process of moulting has been seen, though only in situations where food is scarce.[3] Diet quality also can affect larva development; nutrient deprived larvae are more susceptible to infection by the yeast Candida albicans.[3]
Eggs are smooth and spherical in appearance, with a size ranging from 0.4 to 0.5 mm. Coloring ranges from pink to cream to white.[5] They are laid in clusters in small cracks and crevices in the hive, and can take anytime from 7.2 to 21.8 days to hatch.[4]
Larva range in size from 3 to 30 mm long, and are white or dirty gray color. They feed on honey, pollen, cast off skin of honeybee larvae, and the midrib of the wax comb; cannibalism has also been observed in food shortages. Less often, they are found in bumblebee and wasp nests, or feeding on dried figs.[6] Feeding is more intense during earlier instars compared to later instars. They can remain in the larval stage anywhere between 28 days to 6 months, during which they undergo eight to ten molting stages. While silk is spun during all stages, at the last instar the larvae spins a cocoon of silk for itself and enters the pupal stage.[3]
Pupae are immobile, do not feed, and remain housed in their cocoon for 1 to 9 weeks until emerging as adults.[3] Size ranges from 14 to 16 mm.[5] Pupae start off as a brownish white, but gradually darken to a dark brown color just before adults are ready to emerge.[4]
Adult moths are brown gray and range from 10 to 18 mm in length.[5] The adults' wingspan is 30 to 41 mm. This moth flies from May to October in the temperate parts of its range, such as Belgium and the Netherlands. Females are larger and heavier than males, and possess a characteristic beaklike head.[4] The outer margin of the forewing is smooth and the labial palp is extended forwards.[4] Males are identified by the semilunar notch.[4] Females live for an average of 12 days; males live for an average of 21 days.[4]
G. mellonella larvae parasitize wild honeybees. Eggs are laid within the hive, and the larva that hatch tunnel through the honeycombs that contain honeybee larva and their honey stores. The tunnels they create are lined with silk, which entangles and starves emerging bees, a phenomenon known as galleriasis.[3] Tunnels also result in massive destruction of the combs. As a result, honey is wasted as it leaks out when cell caps are eaten.[3] Finally, both G. mellonella adults and larvae can be vectors for pathogens that can infect honeybees, including the Israeli acute paralysis virus (IAPV) and the black queen cell virus (BQCV).[3]
Apanteles galleriae parasitizes G. mellonella larva inside the beehive. 1-2 eggs are laid by the adult Apanteles galleriae on each larva, though only one succeeds in parasitizing the host and surviving. The parasite emerges and ruptures the host body, and pupates into a small cocoon. Parasitism increases gradually, starting in February, reaching its peak in May, then declining until July. However, it is unlikely that this parasite will take root in a strong, healthy colony as they will be kept out of the hive by bees. Even if they are able to enter the hive, it is difficult to navigate through the darkness in order to find their host.[3]
Habrobracon hebetor also parasitizes G. mellonella adults, along with other members of the family Pyralidae. It uses male-secreted sex pheromones to locate its host.[3]
Males call for females with ultrasonic sound pulses that attract virgin females and initiate courtship[7] Once females get closer, males produce a sex pheromone to initiate mating.[3] There are many known kinds of sex pheromone including nonanal, decanal, hexanal, heptanal, undecanal, 6,10,14 trimethylpentacanol-2 and 5,11-dimethylpentacosane.[3] It is also known that these pheromones are often used to create traps to attract females. However, as traps baited with these pheromones do not attract virgin females over long distances, acoustics have to be used to draw females in first.[3]
Males generate ultrasonic sound pulses at 75 kHz, 200μs per pulse that are used to attract females for mating.[7] This is generated by twisting an end of the tymbal, the membrane that produces sound in insects, with the wings. This causes the tymbal to buckle and results in the emission of an ultrasonic pulse.[8] However, isolated males will not generate sound, thus stimulation from other wax moths is required.[8] Females respond to these pulses by fanning their wings, resulting in 40 and 80 Hz wingbeat frequencies that are detected by the males; which then produces sex pheromones so the female can find him.[8]
Both sexes are equipped with a sensitive tympanic hearing organ that allows the great wax worm to perceive high frequency sound.[8][7] This likely resulted from selective pressure from insectivorous bats; being able to detect their echolocation would enable G. mellonella to avoid being eaten. Female tympanic membranes are 0.65 mm across; males’ are 0.55 mm across. They are located on the ventral side of the first abdominal segment.[7]
Emitters that produced ultrasonic sounds at similar frequencies as echolocation prompted G. mellonella to tilt their head and then exhibit dropping, looping, and freezing behaviors, all of which are meant to evade predators. The head tilt was a direct response to sound reception; once tympanic hearing organs were destroyed, this response was lost.[7] Notably, predator evading behaviors were not exhibited when G. mellonella was exposed to lower frequency ultrasounds of moderate intensity.
G. mellonella seems to be able to differentiate between different frequencies and pulsing patterns. It has been hypothesized that G. mellonella use the 30–100 Hz range for communication with other members of its species. This is an ideal frequency as honeybees, its host, generally do not produce sound in this range.[8]
This species of moth is a major parasite of the wild and cultivated honey bee, costing millions of dollars of damage each year. It is said to be present in any area where beekeeping is practiced.[2][9] After eggs are laid in the hive, the larvae burrow through the honeycombs and cause massive destruction, in addition to trapping emergent bees. Measures have been developed to prevent and manage infestations, but many have unresolved downsides.
Wax moth larvae are commonly raised and sold as food for captive reptiles and arthropods.[10]
G. mellonella causes massive economic losses in the honeybee cultivation industry; the Southern U.S. loses 4-5% of its profits per year due to this one pest.[3] In order to prevent or manage infestations, cultivators are encouraged to maintain sanitary conditions for their bees, as it will keep the colony strong so they can keep G. mellonella out. Cracks and crevices should also be sealed so that adult G. mellonella cannot lay their eggs there. Combs should be replaced regularly and infested combs should be removed as soon as possible.[3]
Temperature treatments also destroy G. mellonella at all stages of its life cycle. Heat treatment keeps the combs and beekeeping equipment at 45-80 °C for 1–4 hours, or in hot water for 3–5 hours.[9] However, heating at this temperature can cause sagging and distortion of the wax. Cold treatment cools the combs to -15 to -7 °C for 2-4.5 hours.[3]
Chemical fumigants also destroy all stages of G. mellonella and are economically convenient. At present, only CO2 is approved to treat infested colonies, because other chemicals leave residues that make their way into the honey produced and pose risks for the person treating the hive.[3]
Usage of gamma radiation to sterilize male pupae, or the male sterilization technique (MST), has also been used to control Galleria mellonella populations. 350 Gy of ionizing radiation was found to be most effective, and a ratio of 4 sterilized males to 1 normal male to 1 female resulted in the greatest decrease of hatched eggs and larvae that became pupae.[11]
The waxworms of the greater wax moth have been shown to be an excellent model organism for in vivo toxicology and pathogenicity testing, replacing the use of small mammals in such experiments.[12] The larvae are also well-suited models for studying the innate immune system. In genetics, they can be used to study inherited sterility. NOTE: cellular and humoral immunity are part of acquired immunity, which is only in vertebrates. Insects only have innate immunity.
Experiments with infected waxworms support the hypothesis that the bacterial stilbenoid 3,5-Dihydroxy-4-isopropyl-trans-stilbene has antibiotic properties that help minimize competition from other microorganisms and prevents the putrefaction of the insect cadaver infected by the entomopathogenic nematode Heterorhabditis, itself host for the Photorhabdus bacterium.[13]
G. mellonella is reported to be capable of hearing ultrasonic frequencies approaching 300 kHz, possibly the highest frequency sensitivity of any animal.[14]
In 2017, an international team of searchers led by Dr Federica Bertocchini, published in the scientific journal Current Biology, that the larvae could degrade Polyethylene.[15] This ground breaking news opened the way to new solutions for plastic waste management through bio-recycling/upcycling/degradation. Recent research by Dr. Federica Bertocchini[16] at her lab in Madrid, shows that enzymes contained in the greater wax moth larvae’s saliva can oxidize and depolymerize at room temperature and neutral pH, within hours, polyethylene (PE), one of the most produced and sturdy polyolefin-derived plastics. Polyethylene is one of the most difficult plastics to break down. Investigations are conduct by the CSIC/CIB as well as the Spanish company Plasticentropy S.L. in Madrid, to determine how these caterpillar’s enzymes can be used to set up a technological solution to bio-degrade the world's excess of plastic waste.[15]
Another closely related species of waxworm, Plodia interpunctella, has been the subject of research which isolated two strains of bacteria from its gut, Enterobacter asburiae and Bacillus species which have been demonstrated as capable of growing on and decomposing polyethylene plastic in a laboratory setting.[17]
As a widespread and somewhat notorious species, the greater wax moth has been described under a number of now-invalid junior synonyms:[18]
Junior synonyms (and otherwise invalid names) of the genus Galleria are:[18]
Galleria mellonella, the greater wax moth or honeycomb moth, is a moth of the family Pyralidae. G. mellonella is found throughout the world. It is one of two species of wax moths, with the other being the lesser wax moth. G. mellonella eggs are laid in the spring, and they have four life stages. Males are able to generate ultrasonic sound pulses, which, along with pheromones, are used in mating. The larvae of G. mellonella are also often used as a model organism in research.
The greater wax moth is well known for its parasitization of honeybees and their hives. Because of the economic loss caused by this species, several control methods including heat treatment and chemical fumigants such as carbon dioxide have been used.
The caterpillar of G. mellonella has attracted interest for its ability to degrade polyethylene plastic.
La polilla de la cera, cuya larva es conocida como gusano de la cera (Galleria mellonella), es una especie de insecto lepidóptero del suborden Glossata y del clado Ditrysia. Se originó en el Viejo Mundo y ha sido introducida a otras partes con colmenas de abejas. Hoy en día alcanza una distribución mundial. Llega a ser una plaga agrícola[1] en las colmenas de abejas melíferas.
En 2017, un equipo internacional de investigadores dirigido por la Dra. Federica Bertocchini, descubrieron que larvas pueden degradar el polietileno (PE), hecho que fue objeto de una publicación en la revista científica Current Biology [2].
Esta innovadora noticia ha allanado el camino para nuevas soluciones de gestión de residuos plásticos a través del bio-reciclaje/reciclado/degradación. Investigaciones recientes de la Dra. Federica Bertocchini[3], en su laboratorio de Madrid, demuestran que las enzimas contenidas en la saliva de las larvas de la polilla de la cera pueden oxidar y despolimerizar temperatura ambiante y pH neutro, en pocas horas, el polietileno (PE). El polietileno es uno de los plásticos más difíciles de descomponer, y a su vez uno de los más producidos y robustos, derivado de la poliolefina. El CSIC/CIB y la empresa española Plasticentropy S.L. en Madrid están realizando investigaciones para determinar cómo se pueden utilizar las enzimas de estas orugas para implementar una solución tecnológica y industrial que biodegrade el exceso de residuos plásticos en el mundo.
Mariposa de constitución ancha y robusta y color de base marrón con irisaciones plomizas. En el margen de las alas presenta flecos con matices clarooscuros, y en la mitad inferior algunas líneas negras longitudinales. Las alas posteriores son de color gris claro, con nervaciones sobresalientes.
La mariposa y su oruga habitan en recintos coloniales con panales de abejas. La oruga se alimenta de cera de abeja.
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(ayuda) La polilla de la cera, cuya larva es conocida como gusano de la cera (Galleria mellonella), es una especie de insecto lepidóptero del suborden Glossata y del clado Ditrysia. Se originó en el Viejo Mundo y ha sido introducida a otras partes con colmenas de abejas. Hoy en día alcanza una distribución mundial. Llega a ser una plaga agrícola en las colmenas de abejas melíferas.
En 2017, un equipo internacional de investigadores dirigido por la Dra. Federica Bertocchini, descubrieron que larvas pueden degradar el polietileno (PE), hecho que fue objeto de una publicación en la revista científica Current Biology .
Esta innovadora noticia ha allanado el camino para nuevas soluciones de gestión de residuos plásticos a través del bio-reciclaje/reciclado/degradación. Investigaciones recientes de la Dra. Federica Bertocchini, en su laboratorio de Madrid, demuestran que las enzimas contenidas en la saliva de las larvas de la polilla de la cera pueden oxidar y despolimerizar temperatura ambiante y pH neutro, en pocas horas, el polietileno (PE). El polietileno es uno de los plásticos más difíciles de descomponer, y a su vez uno de los más producidos y robustos, derivado de la poliolefina. El CSIC/CIB y la empresa española Plasticentropy S.L. en Madrid están realizando investigaciones para determinar cómo se pueden utilizar las enzimas de estas orugas para implementar una solución tecnológica y industrial que biodegrade el exceso de residuos plásticos en el mundo.
Vahaleedik ehk vahakoi ehk mesilaseleedik (Galleria mellonella) on liblikaliste seltsi kuuluv putukaliik.
Röövikutest kooruvate liblikate mõõdud on varieeruvad: sirulaius 1,5–3 cm. Eestiivad on emasel violetjashallid ja isasel pruunikad, tagatiivad aga hallid.
Vahakoi kuuleb ultraheli sagedustel kuni 300 000 hertsi.[1]
Vahakoiröövikud arenevad mesitarudes ja toituvad mesilasvahast, jättes kärgedele võrgendikihi.
Vahakoiröövikud võivad kahjustada selliseid mesilase perekonna liike nagu meemesilane, Apis cerana, Apis dorsata, Apis florea.
Mesitarus arenev parasiit rikub kärgi, mett, pergat jms, tekitades mesilasperele kahju. Vahaleediku massiline esinemine võib viia mesilasperede hukkumiseni. [2]
Kui vaha on söödud, hakkavad röövikud toituma eelmiste põlvkondade väljaheidetest.
Röövikuid kasvatatakse ka kultuuris ja kasutatakse lemmikloomade söötmiseks ja teadusuuringutes.
Metalnikovi eksperimendid 20. sajandi alguses tõestasid, et vahakoiröövikute areng võib peatuda, kui neid toita üksnes vahaga.[3]
Röövikute immuunsüsteemi komponendiks on hemotsüüdid (professionaalsed fagotsüüdid), mis 'korjavad' kahjulikuna tunduvad sissetungijad kokku ja hävitavad.
Röövikuid kasutatakse mitmete imetajatel esinevate haiguste uurimisel mudelorganismidena.
Legionella pneumophila bakter, kes põhjustab osadel loomadel (sh inimestel) leegionärihaigust, on võimeline nakatama ja paljunema röövikute immuunrakkudes.[4]
Vahakoiröövikuid kasutatakse selliste seisundite patogeneesi uurimiseks, mida põhjustavad Fusarium oxysporum, Aspergillus fumigatus, Candida albicans) ja bakterinakkusi, mida põhjustavad Helicobacter pylori[5], Staphylococcus aureus, Proteus vulgaris, Serratia marcescens, Pseudomonas aeruginosa, Listeria monocytogenes või Enterococcus faecalis.[6]
Vahakoi vastsetest valmistatud ekstrakti raviomadustest rahvameditsiinis on teateid juba 17. sajandist, ekstrakti olevat kasutatud võitluses kopsutuberkuloosiga, aga samuti teiste haigustega.
Vene teadlane I. I. Metšnikov avastas 1889. aastal, et vahakoiröövikute seedeensüümid lahustavad tuberkuloosi mükobakteri kesta.[7]
Professor S.I. Metalnikov tõestas vastsete erilist vastupidavust katku- ja difteeriabakteritele ning teistele inimeste jaoks patogeensetele mikroorganismidele.[viide?]
Muhhin uuris vahakoiröövikute alkoholi ekstrakti toimet kardiovaskulaarsüsteemile.
Teadlased avastasid vastsete poolt töödeldavat fermenti ferraasi, mis on suuteline purustama bakteriseinu, mis koosneb lipopolüsahhariididest.
Vahakoiekstrakt sisaldab nukleotiide, aminohappeid, suhkrut ja rasvhappeid, bioloogiliselt tähtsaid mikroelemente, leeliselisi proteaase, aromaatsete ühendite kõrgmolekulaarseid konjuganteamiinohapete ja suhkruga (Muhhin ja kaasautorid 1993. a).[8]
Vahakoi sisaldab aineid, mis stimuleerivad kasvu ja diferentseerivad rakke, millel on väljendunud adaptogeensed, kardiotroopsed, protektiivsed ja isheemiavastased omadused.
Koos muude preparaatidega kasutatakse vahaleedikut järgmistel puhkudel:
Kasutamise kestus 3–4 nädalat.
doi: 10.1128/IAI.00510-12, PMCID: PMC3434583
Published online 2013 May 7. doi: 10.4161/viru.24930, PMCID: PMC3714134
Selles artiklis on kasutatud ingliskeelset artiklit en:Galleria mellonella seisuga 13.05.2015.
Vahaleedik ehk vahakoi ehk mesilaseleedik (Galleria mellonella) on liblikaliste seltsi kuuluv putukaliik.
Röövikutest kooruvate liblikate mõõdud on varieeruvad: sirulaius 1,5–3 cm. Eestiivad on emasel violetjashallid ja isasel pruunikad, tagatiivad aga hallid.
Vahakoi kuuleb ultraheli sagedustel kuni 300 000 hertsi.
Abaraska-sits handia (Galleria mellonella) Pyralidae familiako lepidopteroa da. Galleria generoko espezie bakarra da. Jatorri Eurasiarrekoa bada ere, Ipar Amerika eta Australiara hedatu da. Larbek kalte handiak egin ditzakete erlauntzetan, abarasketako argizariaz elikatzen direlako.
Abaraska-sits handia (Galleria mellonella) Pyralidae familiako lepidopteroa da. Galleria generoko espezie bakarra da. Jatorri Eurasiarrekoa bada ere, Ipar Amerika eta Australiara hedatu da. Larbek kalte handiak egin ditzakete erlauntzetan, abarasketako argizariaz elikatzen direlako.
Isovahakoisa eli vahakoisa (Galleria mellonella) on koisien heimoon ja pesäkoisien alaheimoon kuuluva perhoslaji, jonka toukat syövät mehiläisvahaa ja ovat tämän takia mehiläistenkasvatuksen tuholaisia. Lajin toukkia kasvatetaan ruoaksi terraarioeläimille.
Isovahakoisan toukka kykenee syömään ja hajottamaan polyeteeniä, eli PE-muovia. Laboratoriokokeissa noin 100 vahakoisan toukkaa söi 92 milligramman edestä PE-muovista tehtyä muovipussia 12 tunnin aikana[1] ja eräässä toisessa kokeessa mitattiin toukkien syöneen 14 tunnin aikana 13% PE-muovin massasta. Toistaiseksi ei ole varmuutta siitä, että hajottavatko toukat muovia omilla entsyymeillään vai suorittavatko hajottamisen toukan suoliston bakteerit.[2] Esimerkiksi Plodia interpunctella koisaperhosmaisen lajin suolistosta eristetyt bakteerit Enterobacter asburiae ja tietyt Bacillus suvun bakteerit kykenevät elämään PE-muovin pinnalla ja hajottamaan sitä.[3]
Isovahakoisa eli vahakoisa (Galleria mellonella) on koisien heimoon ja pesäkoisien alaheimoon kuuluva perhoslaji, jonka toukat syövät mehiläisvahaa ja ovat tämän takia mehiläistenkasvatuksen tuholaisia. Lajin toukkia kasvatetaan ruoaksi terraarioeläimille.
La Fausse teigne de la cire (Galleria mellonella) est une espèce de lépidoptères (papillons) de la famille des Pyralidae vivant en Europe. Elle est aussi appelée « gallérie » en France[1],[2]. C'est la seule espèce du genre Galleria.
Ce papillon volant de mai à octobre a une envergure de 30 à 41 mm.
La larve pose un problème aux apiculteurs car elle se nourrit des rayons de cire des ruches. Pour s'en protéger, certains apiculteurs favorisent l'installation d'un nid de frelons européens (Vespa crabro) à proximité des ruches car ceux-ci consomment bien plus de fausses teignes que d'abeilles.
En 2017, une équipe internationale de chercheurs dirigée par Dr Federica Bertocchini[3], a publié dans la revue scientifique Current Biology[4] que la chenille pouvait dégrader le polyéthylène[5].
Cette actualité révolutionnaire ouvre la voie à de nouvelles solutions de gestion de déchets plastiques par le bio-recyclage / up-cycling / dégradation. Les dernières recherches (2022)[6] du Dr Federica Berocchini dans son laboratoire de Madrid, montre que les enzymes contenues dans la salive des larves de la fausse teigne de la cire peuvent oxyder et dépolymériser, en quelques heures, à température ambiante et pH neutre, le polyéthylène[5] (PE), l'un des plastiques dérivés de polyoléfines le plus produit à travers le monde et parmi les plus robustes. Le polyéthylène est l'un des plastiques les plus difficile à détruire. Des recherches sont menées par le CSIC/CIB conjointement avec la société espagnole Plasticentropy S.L.[7], à Madrid, pour déterminer comment les enzymes de ces larves peuvent être utilisées pour mettre en place une solution technologique et industrielle pour bio-dégrader l'excès de déchets plastiques dans le monde.
La Fausse teigne de la cire (Galleria mellonella) est une espèce de lépidoptères (papillons) de la famille des Pyralidae vivant en Europe. Elle est aussi appelée « gallérie » en France,. C'est la seule espèce du genre Galleria.
Ce papillon volant de mai à octobre a une envergure de 30 à 41 mm.
La larve pose un problème aux apiculteurs car elle se nourrit des rayons de cire des ruches. Pour s'en protéger, certains apiculteurs favorisent l'installation d'un nid de frelons européens (Vespa crabro) à proximité des ruches car ceux-ci consomment bien plus de fausses teignes que d'abeilles.
A Galleria mellonella, é unha especie de insecto lepidóptero da suborde Glossata e do clado Ditrysia. Orixinouse no Vello Mundo e foi introducida a outras partes con colmeas de abellas. Hoxe en día alcanza unha distribución mundial. Chega a ser unha praga agrícola[1] nas colmeas de abellas melíferas.
Describiuse unha biodegradación acelerada de polietileno (PE) por larvas desta especie, que o degradan a etilenglicol.[2]
Avelaíña de constitución ancha e robusta e cor de base marrón con irisacións plomizas. Na marxe das ás presenta flocos con matices claro escuros, e na metade inferior algunhas liñas negras lonxitudinais. As ás posteriores son de cor gris clara, con nervacións sobresaíentes.
A Galleria mellonella, é unha especie de insecto lepidóptero da suborde Glossata e do clado Ditrysia. Orixinouse no Vello Mundo e foi introducida a outras partes con colmeas de abellas. Hoxe en día alcanza unha distribución mundial. Chega a ser unha praga agrícola nas colmeas de abellas melíferas.
Describiuse unha biodegradación acelerada de polietileno (PE) por larvas desta especie, que o degradan a etilenglicol.
La tarma maggiore della cera (Galleria mellonella (Linnaeus, 1758)) è un lepidottero appartenente alla famiglia Pyralidae, infestante degli alveari di Apis mellifera
La larva di Galleria mellonella, chiamata anche Camola del miele, è un bruco che raggiunge una taglia massima di circa 3 cm color bianco panna con la testa color marrone. Come cibo vivo costituisce una vera leccornia per tutti gli animali insettivori grazie al gusto dolciastro che gli viene dal miele. Inoltre sono molto usate come esche da pesca, specialmente per la trota. Lungo l'arco della loro esistenza come larve, le camole del miele vivono un primo periodo in cui il diametro del corpo è uniforme per tutta la lunghezza. A questo stadio usano le energie per crescere. Le larve che si trovano in commercio per uso alieutico subiscono un trattamento termico che ne impedisce l'imbozzolamento e quindi la riproduzione.
Nel 2017, un team internazionale di ricercatori guidato dalla dott.ssa Federica Bertocchini, ha pubblicato sulla rivista scientifica Current Biology[1] che le larve della cera possono degradare il polietilene.
Questa notizia rivoluzionaria ha aperto la strada a nuove soluzioni per la gestione dei rifiuti di plastica attraverso il bioriciclaggio/upcycling/il degradazione. Una nuova ricerca[2] della dott.ssa Federica Bertocchini e del suo team, nel suo laboratorio di Madrid, mostra che gli enzimi contenuti nella saliva delle larve della cera possono ossidare e depolimerizzare, in poche ore, il polietilene (PE), uno dei più prodotti e robuste plastiche derivate da poliolefine. Il polietilene è una delle materie plastiche più dure da deradare. La reicerca in corso da parte del CSIC/CIB e della società spagnola Plasticentropy SL a Madrid, ha come target il determinare come gli enzimi di questi bruchi possono essere utilizzati per implementare una soluzione tecnologica per biodegradare i rifiuti di plastica in eccesso nel mondo.[3]
La tarma maggiore della cera (Galleria mellonella (Linnaeus, 1758)) è un lepidottero appartenente alla famiglia Pyralidae, infestante degli alveari di Apis mellifera
De grote wasmot (Galleria mellonella), voorheen wel simpelweg wasmot genoemd, is een nachtvlinder uit de familie Pyralidae, de snuitmotten. Hij wordt grote wasmot genoemd, ter onderscheid van de kleine wasmot (Achroia grisella) en de hommelnestmot (Aphomia sociella). De spanwijdte van de vlinder bedraagt tussen de 30 en 41 millimeter.
De tot 3 cm lange rups van de grote wasmot is bruingrijs, eet bijenwas en stuifmeel en overwintert. De rups verpopt in een zelf gesponnen grijskleurige cocon. Volgroeide rupsen worden ook gebruikt voor menselijke consumptie.[1]
De rups blijkt ook polyetheen te eten en dit plastic daarbij om te zetten in ethyleenglycol.[2]
De grote wasmot is in Nederland en in België een schaarse soort, die wel over het hele gebied verspreid kan worden waargenomen. De soort vliegt van mei tot oktober.
Grote wasmotten kunnen frequenties horen tot 300 kHz, wat van de grote wasmot het dier maakt met het beste gehoor tot dusver (anno 2013) bekend.[3]
De grote wasmot (Galleria mellonella), voorheen wel simpelweg wasmot genoemd, is een nachtvlinder uit de familie Pyralidae, de snuitmotten. Hij wordt grote wasmot genoemd, ter onderscheid van de kleine wasmot (Achroia grisella) en de hommelnestmot (Aphomia sociella). De spanwijdte van de vlinder bedraagt tussen de 30 en 41 millimeter.
Barciak większy, motylica (Galleria mellonella) – nocny owad z rzędu motyli, rodziny omacnicowatych.
Drobny, brunatnoszary[1]. Rozpiętość skrzydeł wynosi 29-40 mm[2].
Gąsienice tego motyla potrafiące trawić wosk pszczeli niszczą w ulach plastry z czerwiem[3] – znalazło to odbicie w angielskiej nazwie Wax Moth (woskowa ćma)[2]; zjadają również owoce i odpadki organiczne[1]. W 2017 r. opisano zdolność gąsienic tego gatunku do trawienia polietylenu ze znacznie większą wydajnością, niż w przypadku stosowanych do tego celu mikroorganizmów[4].
Barciak większy, motylica (Galleria mellonella) – nocny owad z rzędu motyli, rodziny omacnicowatych.
Drobny, brunatnoszary. Rozpiętość skrzydeł wynosi 29-40 mm.
Gąsienice tego motyla potrafiące trawić wosk pszczeli niszczą w ulach plastry z czerwiem – znalazło to odbicie w angielskiej nazwie Wax Moth (woskowa ćma); zjadają również owoce i odpadki organiczne. W 2017 r. opisano zdolność gąsienic tego gatunku do trawienia polietylenu ze znacznie większą wydajnością, niż w przypadku stosowanych do tego celu mikroorganizmów.
A Galleria mellonella é uma espécie de insetos lepidópteros, comummente conhecida como traça-da-cera[1][2] ou a traça-da-colmeia[3] é uma traça pertencente à família das Pirálidas.
É o único membro do género Galleria. Pode ser encontrada na maior parte do mundo, incluindo Europa e a adjacente Eurásia, onde se presume ser sua origem nativa, e como um espécies introduzidas em outros continentes, incluindo na América do Norte e Austrália.
A parente mais próxima, a traça pequena da cera (Achroia grisella), é também um membro da tribo (biológica) Galleriini, família Pyralidae e subfamília Galleriinae.
A Galleria mellonella L. foi referenciada por Lineu em 1758.[3]
A grande-da-colmeia tem um ciclo de vida sobremaneira curto, pelo que, mesmo em condições ótimas, leva cerca de seis semanas a completar o ciclo.[4]
As fêmeas depositam os ovos nos favos das colmeias[5] ao passo que as larvas costumam eclodir entre três e cinco dias mais tarde[4].
Na pendência da fase larval a traça-da-cera tem sete instares e uma duração que vai dos de 21 a 43 dias, consoante a qualidade da alimentação disponível e a ocorrência de baixas temperaturas [6], independentemente das criações serem realizadas em campo ou em laboratório.[7]
O comportamento alimentar das larvas está associado à construção de galerias de seda, as quais são ulteriormente juncadas com matéria excrementícia que se vai acaudalando com o progressivo crescimento das lagartas. Quando as lagartas chegam ao estágio de pré-pupa, escavam depressões nas paredes de madeira das colmeias e nos quadros dos favos, tecem os casulos e pupam, costumando ladear-se umas às outras.[7]
As traças adultas tem uma envergadura de 30-41 mm. Esta traça voa de maio a outubro nas regiões temperadas, sua região de origem, como na Bélgica e Holanda.
Os ovos das traças-da-cera afigura-se duma coloração perlar e duma textura rugosa. Na maioria dos casos, as fêmeas fazem depositam os ovos em aglomerados na ordem 50- 150 ovos por postura.[8]
À medida que se vão desenvolvendo, os ovos vão amarelecendo, perdendo assim a sua tonalidade esbranquiçada original.[8]
Geralmente, dentro dos quatro dias que antecedem a incubação, torna-se visível um anel escuro dentro do ovo, sendo que, mais, tarde, quando já só faltarem doze horas para a eclosão, as larvas completamente formadas já são observáveis através do córion do ovo.[9]
Depois da eclosão, as larvas apresentam uma coloração alvadia, medindo entre 1 e 3 milímetros de comprimento.[10]
A larva, mal eclode, começa a comer imediatamente, alimentando-se de pólen e da cera, que encontra nos favos das abelhas melíferas dentro dos ninhos nas colmeias ou, mais infrequentemente, os favos de vespeiros [11]. Além de comer compulsivamente, também se ocupa a tecer teias, escavar galerias, disseminar fezes, sumamente inutilizando todos os favos por onde passa.[12]
A fase larval passa por sete instares, sendo que a maior parte do crescimento ocorre na pendência dos dois últimos instares.[12][9]Quando chega ao último instar a larva já mede cerca de 20 milímetros de comprimento, apresentando um corpo cinzento com um escudo castanho no protórax.[9]
Estas larvas são tidas como pragas da apicultura[8], sendo certo que, por outro lado, também são comercializadas, porquanto há quem as use como alimento para a criação de animais em cativeiro.
Ao chegar ao último instar, as larvas começam a pupar.[12] Uma vez dentro do casulo, a pupa é inicialmente branca e vai amarelecendo passadas as primeiras 24 horas. [12]
Ao fim de 4 dias a pupa volve-se castanha clara e vai continuando a escurecer progressivamente até ao último estágio. As pupas da traça-da-cera podem medir entre 5 a 7 milímetros de diâmetro e 12 a 20 milímetros de comprimento.[9]
São sexáveis mediante observação dos genitais, com recurso a lupa.[12]
Há dimorfismo sexual entre os espécimes da traça-da-cera, pelo que as fêmeas costumam ser maiores e mais escuras dos que os machos.[12] Dessarte, em média, os machos têm cerca de 21 milímetros de envergadura, ao passo que as fêmeas já orçam uma envergadura na casa dos 32 milímetros.[13]
Com efeito, ainda nesta toada, as fêmeas além de terem maior envergadura, também têm antenas maiores do que as dos machos, na ordem dos 10 a 20%, e o mesmo se passa com as asas dianteiras.[14]
O tamanho e cor dos adultos podem variar substancialmente, conforme a composição e abundância de alimento.[15]
Ao chegar à idade adulta, todavia, a traça-da-colmeia deixa se alimentar, mercê da suas peças bucais ser tão atrofiada, que já não lho permite fazer, em vez disso limita-se a fazer voos curtos, a reproduzir-se e a ocupar-se da ovopositura.[15]
A Vairimorpha ephestiae é um parasita fúngico de a traça-da-cera. O Pseudomonas aeruginosa também é um patógeno para a G. mellonella. As associações de fatores de virulência são as mesmas para as infecções de plantas e animais.
A traça-da-colmeia tem sido demonstrada como sendo uma excelente organismo modelo para experiências in vivo de toxicologia e patogenicidade, substituindo o uso de pequenos mamíferos em tais experimentos.[16]
As larvas são também modelos bem adequados para os estudos do sistema imune inato. Em genética, eles podem ser usados para estudar esterilidade herdada em insetos. NOTA: imunidade celular e humoral são parte da imunidade adquirida, que é só para vertebrados. Os insetos só tem imunidade inata.
Experiências com larvas da cera infectados suportam a hipótese que o estilbenóide bacteriana 3,5-di-hidroxi-4-isopropil-trans-estilbeno tem propriedades antibióticas que ajudam a minimizar a competição de outros microrganismos e impede a putrefacção do cadáver insetos infectados pelos nematoides entomopatogénicos do género Heterorhabditis, este próprio é o hospedeiro para a bactéria do género Photorhabdus.[17]
A G. mellonella é relatada como sendo capaz de ouvir frequências ultrassónicas que se aproximam de 300 kHz, possivelmente a maior sensibilidade á frequência que qualquer outro animal.[18]
Em 2017 descobriu-se que a larva de G. mellonella transforma Polietileno PE em Etilenoglicol (Álcool),[19] podendo vir a ser utilizadas para combater a poluição.[20]
Como uma espécie difundida e pouco notórias, a traça-da-colmeia foi descrita em uma série de agora inválidos sinônimos: [21]
Sinonímia (e nomes de outro modo inválidos) do gênero Galleria' são:[21]
A Galleria mellonella é uma espécie de insetos lepidópteros, comummente conhecida como traça-da-cera ou a traça-da-colmeia é uma traça pertencente à família das Pirálidas.
É o único membro do género Galleria. Pode ser encontrada na maior parte do mundo, incluindo Europa e a adjacente Eurásia, onde se presume ser sua origem nativa, e como um espécies introduzidas em outros continentes, incluindo na América do Norte e Austrália.
A parente mais próxima, a traça pequena da cera (Achroia grisella), é também um membro da tribo (biológica) Galleriini, família Pyralidae e subfamília Galleriinae.
Galleria mellonella, molia mare a cerii, este un dăunător al albinelor melifere. Moliile cerii au fost observate pentru prima dată în America de Nord în 1806.
Galleria mellonella, molia mare a cerii, este un dăunător al albinelor melifere. Moliile cerii au fost observate pentru prima dată în America de Nord în 1806.
glej članek
Veliki voščeni molj (znanstveno ime Galleria mellonella) je metuljček, katerega ličinke so pomemben škodljivec v čebeljih panjih.
Odrasli metulji majo premer kril med 30 in 41 mm, letajo pa med majem in oktobrom.
V zadnjem času so znanstveniki veliko pozornost namenili ličinkam, ki imajo sposobnost predelave polietilena. V laboratorijskih poizkusih je sto ličink G. mellonella v 12 urah predelalo 92 miligramov polietilenske nakupovalne vrečke[1], kar predstavlja potencialno rešitev za predelavo plastike. Za dokončno potrditev pa bo potrebnih še veliko dodatnih raziskav.
Ličinke velikega voščenega molja, ki se hranijo s čebeljim voskom, so škodljivec v čebeljih panjih, saj s svojimi iztrebki širijo spore bakterije Bacillus larvae, te pa povzročajo gnilobo čebelje zalege (Pestis apium)[2]
Veliki voščeni molj je bil opisan pod mnogimi sinonimi, med katerimi so še danes v veljavi:
Veliki voščeni molj (znanstveno ime Galleria mellonella) je metuljček, katerega ličinke so pomemben škodljivec v čebeljih panjih.
Större vaxmott (Galleria mellonella)[1] är en fjärilsart som beskrevs av Carl von Linné 1758. Större vaxmott ingår i släktet Galleria och familjen mott.[1][2][3] Enligt den finländska rödlistan[4] är arten nära hotad i Finland. Arten är reproducerande i Sverige.[3] Artens livsmiljö är kulturmarker och andra av människan skapade miljöer.[4] Inga underarter finns listade i Catalogue of Life.[1]
Fjärilarna lägger sina ägg i bisamhällen med bivax och larverna utvecklas där.[5]
2017 publicerades en studie om larvernas förmåga att bryta ned plast (polyeten som ofta används i förpackningar av olika slag[5]) och istället producera etandiol.[6] En förklaring kan vara att de kemiska bindningarna i plasten är av samma sort som finns i bivax.[5]
Större vaxmott (Galleria mellonella) är en fjärilsart som beskrevs av Carl von Linné 1758. Större vaxmott ingår i släktet Galleria och familjen mott. Enligt den finländska rödlistan är arten nära hotad i Finland. Arten är reproducerande i Sverige. Artens livsmiljö är kulturmarker och andra av människan skapade miljöer. Inga underarter finns listade i Catalogue of Life.
Fjärilarna lägger sina ägg i bisamhällen med bivax och larverna utvecklas där.
2017 publicerades en studie om larvernas förmåga att bryta ned plast (polyeten som ofta används i förpackningar av olika slag) och istället producera etandiol. En förklaring kan vara att de kemiska bindningarna i plasten är av samma sort som finns i bivax.
Galleria mellonella là một loài bướm đêm thuộc họ Pyralidae. Nó là loài duy nhất trong chi Galleria. Nó được tìm thấy ở khắp thế giới, bao gồm châu Âu và cận Eurasia, và là loài du nhập ở Bắc Mỹ và Úc.
Sải cánh của con trưởng thành dài từ 30–41 mm. Loài này hoạt động từ tháng 5 đến tháng 10 ở các vùng thuộc đới ôn hòa (ví dụ như Bỉ và Hà Lan). Sâu bướm và ấu trùng ăn mật bên trong tổ ong.[2]
Các tên đồng nghĩa:[3]
Galleria mellonella là một loài bướm đêm thuộc họ Pyralidae. Nó là loài duy nhất trong chi Galleria. Nó được tìm thấy ở khắp thế giới, bao gồm châu Âu và cận Eurasia, và là loài du nhập ở Bắc Mỹ và Úc.
Sải cánh của con trưởng thành dài từ 30–41 mm. Loài này hoạt động từ tháng 5 đến tháng 10 ở các vùng thuộc đới ôn hòa (ví dụ như Bỉ và Hà Lan). Sâu bướm và ấu trùng ăn mật bên trong tổ ong.
Большая восковая моль, огнёвка пчелиная[3] (лат. Galleria mellonella) — вид молевидных бабочек из семейства огнёвки настоящие (Pyralidae). Вредитель медоносных пчёл[4]. Встречаются всюду, где развито пчеловодство. Восковой молью также называют малую восковую моль (Achroia grisella)[3][5][6].
Длина 18—38 мм. Передние крылья коричнево-сероватые с коричнево-жёлтым задним краем и тёмными пятнами. Задние крылья светлее. Распространены всесветно. Гусеницы живут в ульях медоносных пчёл, где питаются воском[6]. Взрослые бабочки не питаются; у них недоразвиты ротовые органы и органы пищеварения. Яйца имеют беловатый цвет и размер 0,35 на 0,5 мм, развиваются 5—8 суток. Из них выходит личинка длиной 1 мм с желтоватой головой и 8 ногами. Позднее они вырастают в гусениц длиной до 18 мм с буроватой головой. За весь период своего развития одна личинка моли может повредить сотни пчелиных ячеек. Через 25—30 суток гусеницы окукливаются, для чего находят трещину или щель, а иногда выгрызают ямку. Куколки в ходе созревания меняются в окраске с жёлтого на коричневый (их длина у самок — около 16 мм, а самцов — 14 мм). Взрослые бабочки живут 7—12 дней (самки) и 10—26 (самцы)[7].
В начале своего развития гусеница моли питается мёдом и пергой. Далее она переходит к питанию восковыми сотами, смешанными с остатками коконов. Поедая воск, повреждает пчелиные соты и покрывает ходы шёлком. Гусеницы повреждают не только восковые соты, но и расплод, запасы мёда, пергу, рамки и утеплительный материал ульев. При сильном заражении гусеницы поедают друг друга и помёт предыдущих поколений. Пчелиные семьи слабеют и могут погибнуть или покинуть улей[7].
Гусеницы большой восковой моли способны разлагать полиэтиленовые пакеты. В эксперименте, когда их оставили наедине с пакетом, дыры в нём стали появляться через 40 минут. Примерно за 12 часов около 100 гусениц съели 92 миллиграмма пластика. Они не только разгрызают полиэтилен, но и расщепляют его химически: на пластик действует даже гомогенат из гусениц. Установлено, что при этом образуется этиленгликоль. Неясно, вырабатывает ли нужные ферменты сама гусеница, или микрофлора её пищеварительной системы[8][9][10]. Ранее способность поедать полиэтилен и расщеплять его с помощью бактерий была обнаружена у гусениц бабочки Plodia interpunctella[en] из того же семейства[11].
Из естественных врагов для борьбы с восковой молью используют бактериальные препараты (Bacillus thuringiensis, Bacillaceae; Pseudomonas aeruginosa), нематод Heterorhabditis bacteriophora (Heterorhabditidae), перепончатокрылых наездников-яйцеедов трихограммы (Trichogramma), Apanteles galleriae (нид.)русск. (бракониды (Braconidae)), мух Archytas marmoratus (вьетн.)русск. (тахины (Tachinidae))[12].
Большая восковая моль, огнёвка пчелиная (лат. Galleria mellonella) — вид молевидных бабочек из семейства огнёвки настоящие (Pyralidae). Вредитель медоносных пчёл. Встречаются всюду, где развито пчеловодство. Восковой молью также называют малую восковую моль (Achroia grisella).